HARVARD UNIVERSITY.

LIBRARY

OF THE

MUSEUM OF COMPARATIVE ZOÖLOGY. [07 \354Ub

Gar No Moog Jul as na.

Internationale Entomologische Zeitschrift.

Organ

des

Internationalen Entomologen-Bundes

zu

Guben.

Herausgegeben unter Redaktion von P. Hoffmann.

Il. Jahrgang (1908/09).

E. Fechners Buchdruckerei (H. Scholz) Guben,

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Inhalts -Verzeichnis.,

I. Original-Arbeiten. Seite Bastelberger, San.-Rat Dr.: Neue exotische Aeida- liden aus meiner Sammlung 33, 37 —_ Weitere neue Geometriden ausmeiner ‚Sammlung 98, 105 Ein neues Genus und 2 neue süädamerikanische Orthostixinae 267 Besehreibung eines neuen "Genus und 5 neuer Spapnerarten aus Angola in meiner Sammlung 2s1 Biehl, A., Prof: Merkwürdige Fühlerbildung bei einem Athous niger L. . 249 Blaha, Eduard: Wanderzug der Kohlweißlinge 124 Bocklet, Conrad: Ein eynandromorphes Exemplar von Epinephele titbonus L. . . 125, 131 Bornemann, W. P.: Der Lichtfang 26 Cornelsen, H.: Eierversand . x i . i 52 Ein Aglia tau-Pärchen, das im November schlüpfte ö 24) Fischer, E.: Catocala fulminea Scop. 255 Fohl, Fritz: Leptidea brevipennis Muls. 141 Fruhstorfer, H : Neue palaearktische Satyriden 5) Eine für Indien neue Satyride 10 Neue Parnassier aus der mnemosyne - Gruppe 17 Eine neue On ishopsenuansg von den Süd- philippinen ö 5 5 e 5 39 Neue Papilio-Rassen 49 Drei nene Limenitis-Rassen 50 Eine neue Zerynthia 58 Neue Argynnis-Rassen . 69 Neue Lycaeniden . . 85, 91,99 Neues über die Gattung Wi aigeum : 113 Neue Lycaeniden aus dem Tapua-Gebiete 114 Neue palaearktische Rhopaloceren . 194 Berichtigung . o 29 Neue palaearktische Rhopaloceren E . 215 Neue Rhopalocerarassen der Insel Bali . 238 Eine neue Neptis von der Insel Saleyer 238 Ein mimetischer Papilio aus Formosa 282 Fuchs, Ferd.: Sesia spuleri n. sp. 33 Gillmer, M.: Das ganz blaue Q@ von oenenat jearus Rott. mit roten Randflecken ab. in ame- thystina m. 1, 10 Das Verzeichnis der von C. H. Beske in den Jahren 1826 bis 1829 bei Hamburg gefunde- nen Lepidopteren . k 0 . 11. 25,53 97, 65, 77, S6, 90, 100, 114, 121, 129, 138, 146, 153, 178, 189, 265, 286, 312 Präparate zur Bestimmung des Flügelgeäders der Schmetterlinge . 52 Kleine Nachrichten über einzelne Schmetter- lingsarten . 135, 140 206 Berichtigung 80 Weitere Mitteilungen über die Entwickelung der beiden Generationen ‘von Stenoptilia (Akdinia) pneumonanthes Schleich . „210 222 229 Das Ueberwinterungs-Stadium der Raupe von Lycaena alcon F & 23) Ueber das Vorkommen und die Häufigkeit von Chrysophanus virgaureae L. in der näheren Umgebung Hamburgs 253 Catocala electa Borkh. ab. suffusa Gillmer n. ab. 232 Zur Ueberwinterung der Puppen von Thau- matopoea nrocessionea L. c a R : 024 Gramann, A., Dr. phil.: Weiteres zur Melanismus- frage . 5 Grauert, E.: Köderfang im er e 6 Griep, Bruno: Lepidopterologische Wandlungen in lokaler Hinsicht : 147, 155 161, 169, 177, 182, 195, 199, 230, 245, 246 Grund Arn.: Die Tyeneniden der re von ea (Zagreb, Kroatien) 66, 70, 78

Seite

Gundermann: Antwort auf die Frage: Wie wird eine

Sammlung von Ichneumoniden sachgemäß an-

gelegt und wie werden diese Insekten präpa-

riert? e 308 Habisch: Zucht von Dieranuua erminca " Esp aus

dem Ei . B2) Heinrich, Rudolf: Haben Schmetterlinge Gehörsinn? 275 Hemmerling, Dr.: Studien über die Hautfarbe bei

Käfern ed Schmetterlingen . 116, 121 Heylaerts, P. J. M., Dr.: Bumea subllavella Mill. 4 Heymanns, Wilh.: "Beobachtungen au Insekten in

Industriebezirken . 1S4 Hoffmann, Fritz: Entomologisches Tagebuch für 1907 39, 46,

51, 59, 67, 71, 91, 107, 117, 131, 148,170, 182, 207, 209. Mitteilung, betreffend massenhaftes Auftreten

von Pieris hrassicae L. . 141 Ausflug nach Adelsberg in Krain und Triest- Muggia in Istrien s 284, 294 Hoffmann, P.: Boarmia luridata bs ae eh n. ab. 38 -— Parmassius apollo ab. novarae . 141 Praktische Neuheit . 296 Jahn, Otto: Colias edusa F. R 255 Keßler, Alfred: Verzeichnis der in und Ber Sorte: feld (Lausitz) vorkommenden Coecinelliden 236 Kostial, J.: Philosamia eynthia in Wien 212 Krauße, A. H., Dr. phil.: Ueber einige neuere ento- mologische Arbeiten biologisehen Inhalts 40, 47 Auf Sardinien ö 6 . 61, 67, 88 Zur Melanismusfrage 124 Bombus terrestris dettoi m. A 0 R 132 Zwei neue Hummelformen aus Schweden: Bombus pratorum aureus :m. und Bombus soroönsis quattricolor m. . 6 135 Eine neue Hummelform von Sinn: Ben bus hortorum arborensis m. b 139 —_ Die Formen von Bombus terrestris a, 163 Konuay R.: Die Zucht von Callosamia promethea Dru. 12 Die Selbstanfertigung von Zuchtbehältern . 20 -—- Die Zucht von Arctia casta Esp. . ö 52 Meier, nr Neues über die Bun von Chaerocampa elpenor L. ö > 5 225 Meißner, Otto: Einige Bötierkunken über die Insekt tentlügel e 4, 12 Das Summen der Dipteren o e e 20 Kurze Bemerkungen über den Zuckergast (Lepisma saccharina L.) 47 Weitere Bemerkungen über Lepisma saccha- rina L. 12 Die Entwiekelungsdauer von Cimbex femorala \ L. (Cimbex betulze Zadd.) : 132 Merkwürdiges Verhalten von Libellen 140 Nachtrag zu „Das Summen der Dipteren“ 2) Frühherbstwanderung . F ; 211, 215 220 Die Eichenschrecke . 224 Müller, ©.: Beobachtungen aus dem ienesleben von Lasiocampa et L. und Maerothylacia rubi L. ® 171 Niepelt, Wilh.: Diecrisia sanio L. (russula ) 3 ab! nov. immarginata . 151 _ Pergesa (Chaerocampa) elpenor 0, forma daubi, eine neue Sphingiden Form 209 Paetz, Jos.: Geschlechtswitterung bei Lasiocampa. quereus . 5 220 Eee, Eizucht von "Argynnis paphia 5 107 Pirling, E.: Syntomis phegea L. . 2 a7 Prochnow, O©., Dr.: Bemerkungen zu Otto Mi Baer „Dipterologischen Bemerkungen®* über das Summen der Dipteren . 5 - c e 6 Zuchtglas . B 87 Vom Werte des Sammelns biologischer Objekte 89, 101 115, 122, 130

Seite Prochnow, O., Dr.: Ueber Karl Möbius’ aesthetische Betrachtung der Tiere 137 Reaktionen auf Temperatur- -Reize 145, 154 197 Der Erklärungswert des Darwinismus und Neo-Lamarckismus als Theorien der indirekten Zweckmäßigkeitserzeugung . 285, 294 305, 315 Ramme, Willy: Berichtigung 319 Fin Zwitter von Agrotis corlioen Hb. 313 Reinberger: Catocala fraxini L. 268 Lymantria monacha L. 268 Thaumetopoea Brenn L. 269 Pieris brassicae L. 269 Richter, Otto: Beobachtungen aus dem Tiebesleben

der Spinner 219 Rothke, Max: Einiges enardamerikansehe Catocalen 215, 223,

231, 235, 243, 254, 258, 267, 274, 287, 303, 308, 313,

318, 825

Rudow Dr.: Einige Beobachtungen, das Leben der Blattwespen- Gattung Lyda betreffend 12, 50, 92

Einige Ergebnisse der Sammelreise im Sommer 1908 . 179, 183 190

Scheele: Etwas über die Vermehrung von Faltern,

im besonderen über die Zucht von Cerura fureula 2 Scherdlin, Paul: Einiges über die Stechmücken 156, 165 Schirmer, Carl: Wiekwird eine Sammlung von

Ichneumoniden sachgemäß angelegt und wie

werden diese Insekten präpariert? ® 238 Schultz, Oscar: Melanstische Formen von Argynnis

paphia L. . : 317, 322

Ueber eire Tokalrasse, sowie "einige Nhaner-

tionen von Dicranura vinula L. 0 387 Schulz, Gustav Leo: Melanismus im hin eis

fälischen Industriegebiet . 79 Schulz, H.: Neue Varietäten palacarktischer Cieindelen 316

Di Varietäten von Macrolenes bimaculaia 323 Selzer, August: Eine kleine Auskunft über Raupen-

(Gewohnheiten einiger Feuerfalter (Chrysopha-

niden) und Anleitung zur Zucht der Falter

von Chr. virgaureae "und Chr. Hinporhor aus

dem Ei © 713 Siegel, A.: Die Zucht von , Taeniocampa opima, Hb. 45

Eine Eizucht von Comacla senex Hb. . 50 Eizucht von Agrotis ypsilon Hufn.. 236 Smolle, G.: Arctia casta Esp. 212

Srdinko, J Ein Beitrag zur Naturgeschichte von Selenephera lunigera Esp. 6 . 18

Ein Beitrag zur Biologie von Agrotis marga- ritacea Vill. 5 106

Ein Beitrag zur Biologie und Zucht von

Agrotis latens Hb. . 259 Stichel, H: Noch einiges über "Neptis hylas (L.) B 97

Leitbericht 5 allyas 2

214, 2 233, 245, 257, 273, 285, 301, Corrigenda En "Addenda zu jüngeren Benen- nungen südamerikanischer Rhopaloceren Trautmann, We Dr.: er Hybriden und deren Aufzucht Der Kalk trägt; zur Variabilität der Schuppen- flügler viel bei .

Kopula zwischen verschiedenen Zygaenenarten Mitteilung über die Variabilität einiger Ver- treter der Familie Psychidae und Beschrei- bung zweier neuer südeuropäischer Formen . Ueber die südlichsten Standorte von Sosia flaviventris

Einige Sammeltage a aus dem Alpengebiet Hyalina lucasi nov. spec.

Eine interessante Form von Zygaena purpuralis Dunkle Stücke von Zygaena exulans

Tunkl,

Baron Franz: Zu u OnLchlungen an Imaalktien in Indueme „edirken, Tutt, J. W.: Bitte um Auskunft über die Raupen-

Ge wolehsi derFeuerfalter(Chrysophaniden) Uffeln, Karl: Nochmals „Melanismus im rheinisch- westfälischen Industriegebiet“ . Völker, U.: Neues aus der Zuchtpraxis Zucht von Xanthodes malvae Esp. canescens Dup.. Voland, F.: Einiges über das Aufsuchen der Raupe und Puppe von Luceria virens L Wittich, G.: Zur NEN een Jen 2 -Arten Wohnig, A,: Paraseotia fuliginaria L. :

und Polia

ll. Sachregister.

Abax ater Fabr. (Col.) am Köder 86. Aberrationen 322,

Beobachtungen beim Käfer fang 70, 56, 100

sll,

937, 241

254

269 324 316 295 296

IV

Aberrationen von Agrotis lstens Hb. 260; Callophrys rubi Ib, 793 Chrysophanus aleiphron Rott. 66, dorilis Hufn. 77, hippotho& L. 65, phlaeas L. 66, 77; "Coenonympha arcania L. 25, iphis Schiff. 12, pamphilas L. 10, 26, tiphon Rott. 55; Cyaniris argiolus L. SS; Dieranura vinula L. 151; Epinephele tithonus L. 12; Lasiocampa quereus L. 302; Lycaena argiades Pall. 79, argus L. Tl, 138, argyrognomon Bergstr. 146, arion L. 87, astrarche Bergstr. 79, bellargus Rott. ST, eorydon Poda 87, eyllarus Rott. 87, hylas Esp. 79, icarus Rott. 1,11, 79, 154, 178, meleager Esp. 79, minimus Fuessl. 87, orion Tall. 71, semiargus Rott. S7, 313; Thecla pruni L. 54; Waigeum miraculum Druce 113; Zephyrus betulae L 58.

Abraxas adustata Schiff. 183, am Licht 117, 118.

Abraxas marginata L. am Licht 91, 109,

Abraxas sylvata Se. 56, ab. pantarioides Spitz 322.

Abrostola tripartita Hufn. am Licht 132.

Acanthia pipistrelli Jen. (Hem.) Parasit der Fledermäuse 41.

Acherontia atropos L. am Licht 210.

Acidalia aversata L. ab. spoliata Stdgr. am Licht 148.

Aeidalia ineanata L. 153, am Lieht 109, 131.

Acidalia ornata Sc. am Licht 109.

Acidalia planidisca Bastelberger n. sp. 34.

Acidalia punctata Sc. am Licht 131.

Acidalia similata Thnbg. 170.

Acidalia subtaeniata Bastelberger n. sp. 34.

Aecidalia trilineata Se. 294.

Acosmetia caliginosa L., Ei 206.

Acronicta aceris L. 46.

Acronieta alni L. 46, am Köder 148.

Acronicta auricoma F. am Köder 59, 67, 153.

Aeronieta euspis Hb. am Köder 148, am Licht 109, 119.

Acroniceta euphorbiae F, Futterpflanzen 171, 183, am Köder 59, 117.

Acronicta leporina L.46, am Köder 117, Raupe 207.

Acronicta menyanthidis View., Euntwiekelungsgeschwindig- keit 155.

Aeronieta.psi L. 5l, am Köder 149.

Acronieta rumiecis L. 46, am Köder 59, 183.

Actias Leach, Aussterben der Gattung 248.

Adalia-(Col.) Arten bei Sommerfeld (Lausitz)

Adela albieinetella Mn., Fang 324.

Aderung der Insektenflügel 13.

Adkinia siehe Stenoptilia.

Adovia-(Col.) Arten bei Sommerfeld (Lausitz) 236.

Adopaea lineola ©. ab ludovieiae Mab. 294.

Adopaea thaumas Hufn. 132.

Aeroplastizität 41.

Aesthetische Betrachtung der Tiere 157.

Aglia tau L. 51, 148, 219, im November geschlüpft 249, ab. lugens Stafs. 3.

Aglossa pinguinalis L. 117, Ei 133,

Agrilus biguttatus Fabr. (Col.) Fang 101.

Agrilus sinuatus Oliv. (Col.) Fang 101.

Agrotis augur F. am Köder 145, "170, 153, am Licht 109, 182,

Agrotis baja F. 170, 152, Futterpflanzen 153, am Köder 148, 153

Agrotis candelisequa Hb. 107, 260.

Agrotis cinerea L. 108, 260, am Licht 108.

Agrotis c-nigrum L. am Köder 72, 185, am Licht 9, 210.

Agrotis cortieea Hb. am Licht 132 , Zwitter als.

Agrotis erassa Hb. 260.

Agrotis dahlii Hb. am Köder 207.

Agrotis depuneta L. am Köder 183.

Agrotis ditrapezium Bkh. 67, am Köder 71, am Licht 91, 109, 132, 170.

Agrotis exelamationis L. am Röder 109, 149, am Licht 132.

Agrotis latens Hb. 107, Aberration 260, Aufenthalt 259, Flug- zeit 260, Futterpflanzen 260, (Gewohnheit des Falters 260, Verpuppung 260, Zucht 260.

Agrotis linogrisea Schiff. Futterpflanzen 107.

Agrotis lueipeta F. 107, 260,

Asrotis margaritacea Vill., Flugzeit 107, Futterpflanzen 106, Gewohnheiten der Raupe 106, Puppenruhe 107, Raupe 106, Ueberwinterung 106, Verpuppung 107, Zucht 107.

Agrotis oceulta L. 148. am Köder 183.

Agrotis plecta L. am Köder 108, 207, am Licht 13:

Agrotis prasina F. 67, Tl, am Köder 14).

Agrotis primulae Esp. am Köder 149, am Licht 152, iluens Tr. am Köder 170.

Agrotis pronubaL. 107 109, am Licht 109, ab. innuba Tr. am Licht 109.

Agrotis putris L. 108, am Licht 109, 148.

Agrotis rubi View. am Köder 183, schnelle Entwieckelung 236.

Agrotis segetum Schiff. am Köder 183, 207. »

Agrotis signum F. am Köder 132.

Agrotis stigmatica Hb. am Köder 185.

Agrotis strigula Thnbg. am Licht 109, 148.

Agrotis triangulum Hufn. am Köder 149.

Agrotis xanthographa F, am Köder 153, Köder 183.

Agrotis ypsilon Rott., Eizucht 236, Entwickelungsdauer 236, Futterpflanzen 236, am Köder 149, 207, am Köder nach der Ueberwinterung 5l, im November geködert 6.

236.

2, 188,

ab. con-

ab. cohaesa HS. am

BR

Akis granulifera (Col.) Aufenthalt 233.

Albinismus bei Epinephele tithonus L. 12.

Alueita tetradaetyla L. am Licht 118.

Alueitides, ihre Klassifikation 35.

Ameisenjungfer 211.

Ameisenlöwe 211.

Ammoconia eaeeimacula F. am Köder 207.

Amphidasis betularia L. 109, ab. doubledayaria Mill. 35, 79, 80.

Amphipyra perflua F. am Köder 183, pyramidea L. am Köder 207, tragopoginis L. 210.

Anabiotische Zustände 146.

Anagrus subfuseus Först. (Hym.) 194

Anaitis praeformata Hb. am Köder 170, am Licht 132, 183.

Anarta cordigera Thnbg., Fang 324.

Anatis-(Col.) Arten bei Sommerfeld (Lausitz) 236.

Angerona prunaria L. am Licht 118, ab. sordiata Fuessl. am Licht 109.

Anisopteryx aescularia Schiff., Ruhestellung des g' 46.

Anisostieta-(Col.) Arten bei Sommerfeld (Lausitz) 236.

Anomala oblonga (Col.) Aufenthalt 190.

Anopheles costalis Lw. (Dipt.) und bifureatus L., tragung von Krankheiten 163, Bekämpfung 164.

Anthia adelpha Thoms. (Col.) und sexmaculata F., Lebens- weise 221.

Anthophora Latr. (Hym) 311.

Apatura iris L., Gewohnheit des Falters 276.

Aphomia sociella L. am Licht 148.

Apidenbauten 42.

Aplasta ononaria Fuessl. 294.

Aporia erataegi L. 67, 109, Eiablage 284, Futterpflanzen 46, 284.

Appias leptis Feld. balinus Fruhbst. n. subsp. 238.

Apterona erenulella Brd., Sehlüpfzeit 234, erenulella Brd. und helix Siebold 2 4, verschiedene Arten ? 4.

Aptinus mutilatus Fabr. (Col.), am Köder 86.

Araschnia levana L., Saison-Dimorphismus 230.

Archonias bellona phaloreia Fruhst., Beschreibung des 2 237.

Archonias ceritias Feld., gute Art 237, ceritias papilionides Fruhst. Synonym von critias approximata Butl. 237, eritias eritias forma hades Fruhst. ist forma nigripennis Butl. 237, eritias regillus Fruhst. eine tereas-Form 238, eritias regillus forma archidona Fruhst. 241, eritias rubrosparsa Stichel n. subsp. 241.

Archonias pharnakia Fruhst. eine Catastieta 241.

Arehonias tereas God. 241.

Arctia caja L. 27,46, 170, Inzucht 302, am Lieht 148, 183, 210.

Aretia casta Esp. 52, 212, Futterpflanzen 52, Zucht 32.

Aretia maculosa Gerning 106, Suchen der Raupen 260, 286,

Arctia villiea L. am Licht 109.

Areynnis adippe L. auresiana Fruhst. n. subsp. 69, adippe locuples Butl. 69, adippe taurica Stgr. 69.

Argyonis adippe ab. eleodoxa O. 148.

Argynnis aglaja L. 69, 284 295.

Argynnis amathusia Esp. 183; amathusia bivina Fruhst. 214, amathusia bivina forma blandina Fruhst. 214; amathusia bosna Fruhst. n. subsp. 214; amathusia dinara Fruhst. u. subsp. 214; amathusia halesa Fruhst. n. subsp. 214; amathusia pralognana Fruhst. n. subsp. 214; amathusia serena Fruhst. n. subsp. 214; amathusia sibiriea Stdgr. 214.

Argynnis dia L., Il. Generation 209.

Argynnis euphrosyne L. 59. 109.

Argynnis heeate aigina Fruhst. n. subsp. 194, 215, hecate triburniana Fruhst. n. subsp. 214.

Argynnis ino achasis Fruhst., Berichtigung 319.

Argynnis latonia L. 107, 208, im Oktober 210.

Argynnis nerippe Feld. 69, nerippe chlorotis Fruhst. 69.

Argynnis maja Cramer siehe pandora Schifferm.

Argynnis niobe L. ab. eris Meigen 284,

Argynnis pales Schiff. 117, 183, 324.

Argynnis pandora pasargades Fruhst. n. subsp, 69, pandora seitzi Fruhst. n. subsp. 69:

Areynnis paphia L. Eiablage 107, späte Entwickelung 183, Ueberwinterung 108, Zucht 107.

Argynnis paphia L. 52, paphia thalassata Fruhst. n. subsp. 69, forma valesina Esp. 70, melanotische Formen 317, 322.

Argynnis selene Schiff., Aberration 39.

Athous niger L. (Col.), merkwürdige Fühlerbildung 249.

Atmung der Mückenlarven 157, der Wasser-Hymenopteren 194.

Attzcus atlas L., Hautsekret der Raupe 122.

Attaeus orizaba Westw., Fütternngsversuche 124.

Aufenthaltsorte für Callophrys zubi L. 57; Chrysophanus aleiphron Rott. 65, hippotho@ L. 65, phlaeas L. 66; Coenonympha areania L. 25, iphis Schiff. 12, tiphon Rott.53; Epinephele tithonus L. 11, Lethrus cephalotes Fb. (Col.) 86; Zephyrus betulae L. 58.

Aufweichen trockener Schmetterlinge 296.

Augiades sylvanus Esp. 109.

Autotomie 215.

Baris granulipennis Trn. (Col.), Eiablage 222, Verpuppung 222.

Bastarde; Fumea erassiorella Brd.. 9 X betulina Z. 4, Pachytelia unicolor Hufn. g' X villosella 0, 9 4 gibt es- Zygaenen-Bastarde? 164,

Bauchsammler 311.

Ueber-

Bienennest mit Vorratskammero 42; 6 nestern 42.

Biston hirtaria Cl. 51, strataria Hufn,, Eiablage 2.

Blaps eigas L. (Col.), Aufenthalt 233.

Blaps lusitanica (Col.), Afterspritze 233.

Blattlauslöwen 20, 274.

Blumenwespen 311.

Boarmia einctaria Schiff. 5l, am Köder 5l, ab. consimilaria Dup. öl.

Boarmia eonsortaria ab. humperti Hump. 38.

Boarmia erepuscularia Hb. 46, 5l, am Licht 109.

Boarmia luridata ab. cornelseni Hoffm. n. ab. 38, S0, ab. obseurior Stgr. 38.

Boarmia maculata Stdgr. v. bastelbergeri Hirsehke, am Licht 132, 208

Boarmia punctularia Hb. 59, bei Tage an Weidenkätzchen 51.

Boarmia repandata L. am Köder 59, 117, am Licht 109.

Boarmia ribeata Cl. am Köder 149.

Boarmia secundaria Esp. £ am Köder 207, am Licht 183.

Bombus (Hym.) hortorum arborensis Krauße var. n. 139, h. asiatieus Mor. 139, h. sardiniensis Tourn 139, h. wolfü Krauße 139.

Bombus (Hym.) pratorum L. 155, pratorum aureus Krauße n. var. 133.

Bombus (Hym.) soroönsis F. 133, soroönsis quattricolor Krauße n. var. 133.

Bombus (Hym.) terrestris L. 132, 163, terrestris audax Harr. 163, t. autumnalis F. 163, t. caelebs D. T. 163, t. canariensis Perez 163, t. cerberus Friese 165, t. eryp- tarum F. 163, t. dalmatinus D. T. 163, t. dettoi Krauße n. var. 132, t. dissectus Schmiedek. 163, t. faseiatus Friese 163, t. ferrugineus Schmiedek. 163, t. galiurae Krauße 132, 163, t. limbarae Krauße 152, 163, t. luco- rum L. 163, t. patagiatus Nyl. 165, t. renardii Rad. 163, t. sassariecus Tourn. 132, 1635, t. schmiedeknechti Verh. 163, t. soroönsioides Hoffer 163, t. sporadieus Nyl. 163, t. xanthopus Kriechb. 163.

Bombyx mori L. 248, Fütterungsversuche 124.

Bomolocha fontis Thnbg.am Köder ı70, ab. terrieularis Hb. 108.

Botys nigrata Se. Fang 324.

Brephos parthenias L. 106, Fang 46.

Brotolomia metieulosa L. 107, am Köder 59, 67, 207, 208. Cacoecia piceana L. am Köder 148, am Licht 132, podana Se. am Licht 132, 148, semialbana Gn. am Licht 148. Callimorpha dominula L., Futterpflanze 52, quadripunetaria

Poda, Vorkommen 170.

Callophrys rubi L., Aberration 57, Aufenthalt 57, Ei 57, Eiablage 57, Flugzeit 57, Futterpflanzen 57, Gene- rationen 57, Gewohnheiten des KNalters 57, Uebeı- winterung 57, Verbreitung 57, 66, Verpuppung 57, Zirpen der Puppe 57.

Callophrys rubi ab. brunnea Tutt 57, ab. immaeulata Fuchs IT.

Typen von Bienen-

Callosamia promethea Dru., Zucht 12,

Calocampa exoleta L., später Flug 6, am Köder 51.

Calocampa vetusta Hb., im November geködert 6, am Köder 5l, 67, 207, 210.

Calophasia lunula Hufn. 51, 148, am Licht 109.

Galopteryx splendens var. tümpeli Scholz (Neur.) 322,

Calopteryx virgo L., Eiablage 194, Schmarotzer 194, Vor- kommen 140.

Calosuma sycophanta Fabr. (Col.), Fang 101, Schönheit 138.

Calymnia pyralina View., Futterpflanzen 67, 91, am Köder 149, Schlüpfen 132, Verpuppung 108.

Campoplex (Hym.) lydae Rd. und mixtus Gr., Schmarotzer bei Lyda (Hym.), 93.

Carabus arvensis (Col.), Ueberwinterung 46; cancellatus Ill., am Köder 86; fabrieii Panz. 109, 210; hortensis L., am Köder S6; morbillosus F. var. alternans Pall., auf Sardinien 62; nemoralis Ill. am Köder 70, S6.

Caradrina alsines Brahm, am Köder 132, an Licht 117; exigua Hb. am Köder 207; morpheus Hufn. am Köder 132, am Lieht 91, 131; pulmonaris Esp. 59, 71, Futterpflanze 5l, am Köder 148, 149; quadripunctata F. am Köder 207; taraxaci Hb. 131, am Köder 132, am Licht 131, 182.

Carausius morosus Br. (Orth.), kein Regenerationsvermögen 72.

Carpocapsa.pomonella L. 5l, Verpuppung 46, 207.

Catephia alehymista Schiff., Reif der Puppe 122,

Catocala aholibah Strecker, Beschreibung 231.

Catocala alabamae Grote, Beschreibung 232.

Catocala amasia Smith and Abb. 235.

Catocala amatıix Hübrer, Beschreibung 231, Futterpllanze-275, 308, Gewohnheiten des Falters 275, am Lieht 304, Catocala amatrix nurus Walker, Beschreibung 224, 231, Ge-

wohnheiten der Raupe 275

Catocala amiea Hübner, Beschreibung 231, Futterptlanze Gewohnheiten des Falters 268, 274.

Catocala amiea y. lineella Grote 231, y. nerissa Edwards

Catocala angusi, Futterpflanze 308. £

Catocala antinympha Hübner, Beschreibung 243, Eiablage 287, Futterpflanze 308, Gewohnheiten des Falters 267, : 274, 275, am Licht 267, 304.

308,

Catocala badia @rote and Robinson, Beschreibung 243, Futter- pflanze 243, 308, Gewohnheiten des Falters 243, 268.

Catocala briseis Edwards, Beschreibung 224,. briseis groteiana Bailey 224, briseis semielarata Grote 223, .224.

Catocala cara Guenee 224, Beschreibung 224, Gewohnheiten des Falters 259, 268, 275, Zucht 275, 288.

Catocala eara v. carissima Hulst, Größe 218, Zeiehnung 224.

Catocala eelia Edwards 224, celia mopsa Edwards 224.

Catocala cerogama Guenee, Beschreibung 223, 235, Futter- pflanze 308, Gewohnheiten des Falters 275, am Licht 304.

Catocala cleopatra Edwards, Beschreibung 23!.

Catocala coccinata Grote, Beschreibung. 251, Gewohnheiten des Falters 268, 275.

Catocala coelebs Grote, Beschreibung ?

Catocala concors, Futterpflanze 308.

Catocala eoneumbens Walker, Beschreibung 224, Eiablage 287, Futterptlanze 275, 308, Gewohnheiten des Falters 259, 268, 274. 275.

Catoeala erataegi Saunders, Beschreibung 243, Futterpflanze308.

Catocala desdemona Edwards, Beschreibung 243.

Catocala dileeta Hb., Reif der Puppe 122.

Catocala eleeta Bkh. am Köder 183.

Catocala electa ab. suffusa Gillmer n. ab. 232.

Catocala elocata Esp., Reif der Puppe 122.

Catocala elonympha Hb., Futterpflanze 308.

Catocala epione Drury, Beschreibung 254, Futterpfllanze 308, am Licht 304.

Catocala flebilis Grote, Beschreibung 254.

Catocala fraxini L., Futterpflanzen 268, Gewohnheiten des Falters 275, am Köder 207, Reif der Puppe 122, Zucht 268, 296.

Catocala fulminea Seop., Eiablage 255, Fang am Köder 255, Flugzeit 255, Reif der Puppe 122, Suchen der Raupe 255, Zucht 255.

Catocala gracilis Edwards, Beschreibung 231, Gewohnheiten des Falters 268, 274, 275.

Catocala graeilis v. sordida Grote, Beschreibung 231.

Catocala grınea Cramer, Färbung 232, Futterpilanze :

Catocala habilis Grote, Färbung 235, Futterptlanze 2 Gewohnheiten des Kalters 268, 275.

Catocala habilis v. basalis Grote, Beschreibung 235.

Catocala hymenaea Schift., Reif der Puppe 122.

Catocala ilia Guenee, Futterpflanze 275, 308, Gewohnheiten des Falters 275.

Catoeala ilia v. osculata Hulst, Beschreibung 231, Eiablage 287, Gewohnheiten des Falters 275, am Licht 304. Catocala illeeta Walker, Beschreibung 235, Futterpflanze 275,

308, Gewohnheiten des Falters 275. Catocala innubens Guenee, Beschreibung 224, 231, Futter- pflanze 275, 308, Gewohnheiten des Falters 275. Catocala innubens y. hinda French 23], v. seintillans Grote and Robinson 231.

Catocala insolabilis Guen£e, Beschreibung 254.

Catocala judith Strecker, Färbung 254, Größe 254.

Catocala luciana Edwards, Beschreibung 231.

Catocala lupina HS.. Reif der Puppe 122.

Catocala marmorata Edwards, Beschreibung 231.

Catocala mieronympha Guenee, Beschreibung 224, 232 Meyer 235, v. hero Edwards 225, 235, v.j Edwards 232.

Catocala minuta Edwards, Färbung Futterpflanze 308.

Catocala muliereula Guenee, Färbung v. phoebe Edw. 245.

Catocala nebulosa Edwards, Färbung 235.

Catocala neogama Smith and Abboth, Färbung 231, 235, Futter- pflanze 275, 508, Gewohnheiten des Falters 275, Größe 231.

Catoeala nubilis v. apache Polins, Färbung 223, 243, Futter- ptllanze 275, 308.

Catocala nupta L. 224, am Köder 185, 207, Reif der Puppe 122.

Catocala obseura Strecker, Färbung 254, Futterpflanze 308, v. residua Grote 254.

Catocala olivia Edwards, Beschreibung 232.

Catocala paleogama Guenee, Färbung 224, 235 Futterpflanze 275, 308, Gewohnheiten des Falters 274, 275; v. annida Fager 224, 235; v. phalanga Grote 224, 235.

Catocala parta Guenee, Färbung 231, Futterpflanze 275, 308, Gewohnheiten des Falters 274, Zucht 288.

Catocala piatrix Grote, Eiablage 287, Färbung 235, Futter- pllanze 275, 308, Gewohnheiten des Falters 268, 275.

Catocala praeelara Grote and Robinson, Färbung 232, Ge- wohnheiten des Falters 274.

Catocala promissa Esp., Eiablage 255, Reif der Puppe 122.

Catocala relieta Walker, Ei 288, Eiablage 288, Färbung 223, 255, 258, Futterpflanze 308, Gewohnheiten des Walters 259, 274, 308, 314, Größe 258, Raupe 288, 303, Schlüpfen der Raupen 288, Zucht 288.

Catocala relieta v. bianca Edwards, Färbung : Flugzeit 2SS.

Catocala relieta v. elara Beutenmueller, Eiablage 287, Färbung 223, 255, 258, Futterpilanze 275, 308, Gewohnheiten

v. gisela aquenetta

231,. Größe 218,

231,

235, Futterpflanze 308,

VL

nn nn nn, en nn nn nn nn mn

des Falters 259, 267, 274, 308, Größe 258, am Licht Zucht 287.

Catocala relicta v. elda Behr, Beschreibung 255, 259.

Catocala relieta v. phrynia Edwards, Beschreibung 255, Flugzeit 288.

Catocala reteeta Grote, Färbung 254, Futterplilanze 275, Gewohnheiten des Falters 268, 275.

Catocala robinsonii Grote Färbung 254, Futterpllanze 308, Gewohnheiten des Falters 275, Größe 254.

Catoeain sappho Strecker, Beschreibung 254.

Catocala serena, Futterpflanze 308.

Catocala somnus Dodge, Beschreibung 231.

Catocala sponsa L.. Reif der Puppe 122.

Catocala subnata Grote, Färbung 231, 235, Futterpflanze 308, Größe 231.

Catocala tristis Edwards, Färbung 254, Gewohnheiten Falters 268, Größe 254, am Licht 304.

Catocala ultronia Hübner, Färbung 224, Futterpflanze 308, Gewohnheiten des Falters 275, Zucht .288.

Catocala unijuga Walker, Eiablage 287, Färbung 224, Futter- pllanze 275, 308, Gewohnheiten des Falters 259, 268, 274, am Licht 304.

Catocala vidua Smith and Abbot, Färbung 254, Futterpflanze 275, 808, Gewohnheiten des Falters 268, 275, Zucht 238.

Catocala viduata Guenee, Beschreibung 254, Futterpflanze 308.

Catocala whitneyi. Dodge, Beschreibung 243.

Catocalen, nordamerikanische, 218.

Cerambyx (Col.) heros Seop., Fang 100; scopoli Fuessl., Fang 101.

Cerura bieuspis Bkh. 46, bitida Hb. 46.

Cerura fureula L., Begattung 3, Eiablage 5, Futterpflanzen

8, 2. Generat'on 3, Suchen der Kokons 2, Verpuppung 3, Zueht 3, ausstülpbare Drüse 301.

Cetonia affinis (Col.) Fang 150, 190.

Chaerocampa elpenor L., Färbung der Licht 109.

Chaerocampa elpenor forma. daubi Niepelt forma nova 209.

Chaerocampa tersa L., Raupenzeichnung 201.

Chalieodoma Lep.(Hym.)1S4, 3)1; muraria Rtz., Nest 180; pyı- rhopeza, Nest 183.

Chevrieria (Hym.) Niststätte 206.

Chlorophanes viridis L. (Col.), Hautsekret 121.

Chrysis eyanea L. (Hym.) 311.

Chrysomela varians F. (Col.), Aufenthalt 215.

Chrysopa (Neur.), Flugvermögen 13.

Chrysophanus aleiphron Rotrt., Aberration 66, Aufenthalt 65, Eiablage 65, Flugzeit 65, 66, Futterpflanzen 65, Puppen- ruhe 66, Ueberwinterung 65, Verbreitung 65, 88, Ver- puppung 69.

Chrysophanus aleiphron Rott. ab. constrieta Schultz 66; v. gordius Sulz. 66; v. melibaeus Stdgr. 66, 67, 88; ab. mutilata Schultz 66.

Chrysophanus amphidamas Esp., Futterpllanze 86, Verbreitung 56, 153.

Chrysophanus dispar v. rutilus Wernb. und gen. vern. vernalis Horm. bei Agram 66.

Chrysophanus dorilis Hufo., Aberration 77,. 78, beı Agram 70, Ei 77, Eiablage 77. Flugzeit 70, 77, Futterpflanze 77, Gewohnheiten des Falters 77, Lebensweise der Raupe 77, Verbreitung 70, 77, Verpuppung 77.

Chrysophanus dorilis Hufn ab. antico-radiata Gillmer n. ab. 7S; ab. fasciata-extensa Gillmer n. ab. 78; ab. nana Wheeler 77; ab. obseurior Selys Longeh. 77, 78; ab. postieo-radiata Gillmer n. ab. 73; ab. purpureo-punctata Wheeler 78; vw. subalpina Speyer 77; ab. toto-radiata Gillmer n. ab. 78. N

Chrysophanus hippotho@ L., Aberration 65, Aufenthalt 65, Eiablage 65, 73, Flugzeit 65, 66, 73, Rutterpflanzen 65, Gewohnheiten der Raupe, 73, . Puppenruhe 65, Ueberwinterung 65, 73, Verbreitung 65, Verpuppung 65, Zucht 73. } N N :

Chrysophanus hippothoö L. ab. contluens Gerh. 65; ab. orba Schultz 65; v. stieberi Gerh. 65. . ,

Chrysophanus phlaeas L., Aberration 66, Aufenthalt 66, Kutterpflanzen 66, Generationen 66, 67, Gewohnheiten der Raupe 66, Ueberwinterung 66, Verbreitung 66, Ver- puppung 66.

Chrysophanus phlaeas L. ab. alba Tutt 66; ab. eaeruleopunc- tata Rühl 67, 77; gen. aest. eleus Fabr. 67, 77; ab. ob- soleta Tutt 77; ab. radiata: Tutt 77; ab. schmidtü Gerhard 66; ab suffusa Tutt 77; ab. transiens Fuchs 77.

Chrysophanus thersamon Esp., Vorkommen 88.

Chrysopbanus virgaureae L., Aberration 194, Eiablage 73, Flugzeit 73, 171, Ueberwinterung 73, 246, Verpuppung 73, Vorkommen 88, 148, 253, Zucht 73.

Chrysophanus virgaureae athanagild Frubst. n. subsp. 194; virgaureae juvara Fruhst. n. subsp. 195; virg. juvara gals- nintha Fruhst. forma nova 195; virgaureae zermatteusis Fallou 194; virg zermattensis fredegunda Fruhst. forma nova 194; virg. zermattensis onka Fruhst. forma nova 195; virg. zermattensis seriata Fruhst. forma nova 194.

Cieindela (Col.) litoralis Dej. var. dalmatina Sehulz n. var. 317; var. istriensis Schulz n. var. 317; var. oranensis Sehulz n. var. 317; var. tripolitana Schulz n. var. 317.

des

Raupe 225, Falter am

ne

Cieindela (Col.) paludosa Duf. var. bareelonensis Schulz n. var. 317; var. toledana Sehulz n. var. 317.

Cieindelz (Col.) silvatica L. var. obotritiea Schulz n. var. 316.

Cieindela (Col) silvicola Latr var. tatrica Schulz n. var. 316.

Cimbex ac: L, Birkenblattwespe 132, Entwickelungsdauer 132.

Cimbex saliceti Fll. (Hym.\, Vorkommen 190.

Cimex lectularius L. (Hem.) 13.

Cleonus (Col.) candidus Hbst. Lebensweise 221: elathratus Ol.,

Gallen 222; distinetus, Hautsekret 122; glaueus F., Hautsekret 122: hieroglyphieus Ol., Lebensweise 221;

marmoratus F., Hautsekret 122.

Clerus mutillarius Fabr. (Col.) Fang 101.

Cloantha polyodon Cl. am Köder 59, am Licht 109.

Clytus (Col.) areuatus L. und detritus L., Fang 101, 191.

Cnephasia argentana Cl. am Licht 109.

Coeceiden (lHHem.) 5.

Coceinella- (Col.) Arten welehe beiSommerfeld (L.)vorkommen 236.

Coceinelliden-Fauna der Lausitz 236,

Cochlidion limacodes Hufn., Liebesleben 219.

Coenonympha arcania L., Aberration 25, 284: Flugplätze 25, Flugzeit 25, Gewohnheiten des Falters 25, Verbreitung 29, 293.

Coenonympha arcania v. satyrion Esp. 10, 25, Ei 25, Futter- pflanzen 25, Gewohnheiten des Falters 25.

Coenonympha bero neoperseis Fruhst. n. subsp. 10.

Coenenympha iphis Schiff. 284, Aberration 12, Ei 12, Eiablage 12 Flugplätze 12, das 1. Raupenstadium 12, Verbreitung 12

Coenonympha iphis ab. anaxagoras Assmus 12, ab. carpathica Hormuzaki 12, ab. pallida Gillmer 12, ab. subnigra Gillmer 12.

Coenonympha pamphilusL. 60, Aberration 10. 26, Ei26, Eiab- lage 26, Flugzeit 26, Futterptlanzen 26, Generationen 26, Puppenruhe 2, Raupe 26, Ueberwinterung 26, Ver- breitung 26.

Coenonympha pamphilus ab. .bipupillata Cosmoviei 26, v. lyllus Esp. 26, ab, obsoleta Tutt 26, v. orantia Fruhst. n. subsp. 10, ab. pallida Tutt 26, ab unicolor Tutt 26.

Coenonympha pavonina Alph, 10.

Coenonympha tiphon Rott., Aberration 10, 53, Aufenthaltsorte 93, Ei 53, Eidauer 53, Flugzeit 53, Futterpflanzen 53, Gewohnheiten des Falters 53, 109, Gewohnheiten der Raupe 53, Tuppenruhe 53, Raupe 53, Verbreitung 53, Verpuppung 53.

Coenonympha tiphon v. fermana Fruhst. n. subsp 10; v. phi- kenn Esp. 53, rothliebi Stdgr. 53; v. tydeus Leech

Colias: Flügelsehuppen 213.

Colias eocandiea Ersch. 213.

Colias edusa F., Begattung 207, 208, Flugzeit 207, 210, 256, 284, Größe 295, häufiges Auftreten 256, 302.

Colias edusa ab. faillae Stef., auf Sardinien 61.

Colias edusa ®@ ab. helice Hb., häufiges Vorkommen

Colias hyale L. 90, 207, 295, Ende Oktober 210.

Colias nastes B. 213, phicomone Esp. 132, 148, 213, 324, regia Gr.-Gr. 213.

Comacla senex Hb., Ei 50, Eiablage 50, Fang 50, Raupe 50, Puppe 50, Verpuppung 50, Zucht 50.

Conchylis hartmanniana Cl. 67.

Conolophia eonseitaria WIk. 98, maculata Bastelberger spec. n. 98, maculata rubrifusa Bastelberger subsp. n. 282.

Cordulegaster annulatus Ltr. (Neur.), Fang 184,

Cordulia aenea L. (Neur.), vermeintliche Brutpflege 322.

Coseinia striata L. ab. intermedia Spuler 294, ab. melanoptera Brahm 5, 294.

Cosmia paleacea Esp. am Köder 207, 208, am Licht 208.

Cossiden, erste Schmetterlingstypen 156.

Cossus eossus L. 148, am Licht 148, seine Vorläufer 156.

Crambus dumetellus Hb. am Licht. 118, 148, hortuellus Hb. am Licht 91, 170, inquinatellus Schiff. am Köder 183, myellus Hb. am Licht 118, 183, paseuellus L. am Licht 148, perlellus Se. am Licht 148, 170, pratellus L. 67, tristellus F. am Köder 183.

Craniophora ligustri F. am Köder 109, 183, am Licht 132.

Croeallis elinguaria L. @ am Licht 182.

Cryptus’(Hym.) eyanator Gr. und moschator Gr., Schmarotzer bei Lyda (Hym.) 93.

Cuenullia asteris Schiff, Futterpflanzen 183, am Licht 109 lueifaga.Hb. 51, 60, umbratica L. 72, am Licht 148.

Culex (Dipt.) annulatus Schrk. und pipiens L. 156,- Atmung der Larven 157, Eiablage 157, Entwickelungsdauer 157, Nahrung der Larven 157, Puppe 157, Stechapparat 156, Verbreitung 157, Vermehrung 15%. Bekämpfung 164.

Cyaniris argiolus: L., Aberration 88, Flugzeit 88, Gewohnheit der Raupe 286. =

Cyaniris argiolus L. ab. aquilina Grund n. ab. 88, ab. hypo- leuca Ko)l. 83, ab. parvipancta Fuchs 38. ö

Cybosia mesomella L. 117, am Licht 148.

Cymatophora duplaris L., am Köder 132, 148, am Licht 109, Auetuosa _Hb. am Licht 148, or F. am Köder 71, am Lieht 91, 131.

Dapbnis nerii L., Verbreitung 181.

Darwinsche Theorie 233, 294, 305.

Dasychira pudibunda L. 5, 46, am Licht 109.

Dasydia tenebraria Esp. 38, v. innuptaria HS., Fluggebiet 183, v. 'wockearia Stdgr., Ei 140.

Decktlägel 5, 13.

Dedikations-Manie 222.

Deizephila euphorbiae L., Futterpflanzen 201, Raupenzeichnung 201, 230, Verpuppang 182.

Deilepbila euphorbiae ab. euspidata Rebel 2S6. 522.

Deilephila galii Rott., Ursachen des Verschwindens 247,

Deilephila hippopha@s Esp., Raupenzeiehnung 200, 201.

Deılephila nieaea Prun., Raupenzeichnung 201, 230.

Deilephila vespertilio Esp., Eiablage 206, Futterpflanze 206, Verpuppung 206, Behandlung der Puppen 206, Vor- kommen bei Wien 206.

Deniinia pusaria L. am Köder 170, am Licht 109.

Delias belisama balina Fruhst. n. subsp. 238, belisama nakula Smith 238.

Demas coryli L. am Licht 109.

Dendrolimus pini L., am Licht 132,

Depressaria applana F. 46, arenella Schiff. überwintert 46.

Derambila larula Bastelb. n. sp. 281, marginepunctata Bastelb. n. spec. 281.

Dermatopteren (Orth.), Deckflügel 5, Flügelgeäder 13.

Deszendenzfragen 199, 283.

Deszendenzlehre 199, 250.

Diacrisia sanio L. 46, 109, Aberration 181, am Licht 131.

Diaerisia sauio ab. immarginata Niepelt n. ab. JS1, ab. palli- da Stdgr. 181.

Dialephtis bieurvata Bastelb. n. spec. 267, salvini Felder 267.

Dianthoeeia capsincola Hb. am Licht 132. carpophaga Bkh. am Licht 109, eueubali Fuessl. am Köder 72, am Licht 109, nana Rott. am Lieht 91, 1 9.

Diasemia litterata Se. am Lieht 91, 109.

Dieranura erminea Esp., Aberration 257, Fautterpflanzen 139, Verpuppung 139, Zucht 139.

Dieranura erminea v. candida Stdgr. 237.

Dieranura vinula L., Aberration 287, Doppelkokon 255, aus- stülpbare Drüse 501, Schwanzfäden 301.

Dieranura vinula v.aretiea Zett. 287, ab. faseiata Schultz 237, v. (ab.) fenniea Schultz n. ab. 287, v. phantoma Dalm. 287, ab. striata Schultz 287.

Dietyophora europaea L. (Hem.), Aufenthalt 1S4. :

Dilina tiliae Esp., Aberration 178, 194 Entwiekelungsgeschieht 178.

Diloba caeruleocephala L. am Lieht 208.

Dioryetria abietella F. am Köder 153.

Diptera, gute Flieger 5.

-Dipteren, ihr Summen 6, 20, 29.

Dipterygia scabriuseula L. am Köder 117, 149, am Licht 132.

Doppelnadel 296.

Doppelkokons 285.

Doreadion deeipiens (Col) 86.

Doreus parallelopipedus L. (Col.), Fang 101.

Drepana eultraria F., Flugzeit 246, Puppe 246, Raupe 246.

Drepana faleataria L. am Lieht 109, 182.

Drüse der Lycaenidenraupen 114, 115, 121, 239, 265, 266 bei Cerura fureula L. 301, bei Dieranura vinula L. 301.

Dryophanta scutellaris (Hym:), Generationswechsel 232.

Duftschuppen: 213.

Dufttube 121.

Dyseia strigosissima Bastelb. n. sp. 282.

Ei von Acosmetia caliginosa Hb 206, Aglossa pinguinalis L. 153, Callophrys rubi L. 57, Chrysophanus dorilis Hufn. 77, Coenonympha arcania v. alt. satyrion Esp. 25, pamphilus L. 26, tiphon Rott. 53, Comacla senex Hb. 50, Epinephele titbonus L. 12, Lycaena argiades Pall. 90, g. v. polysperchon Bergstr. 90, argus L. 138, semiargus Rott. 159, Miselia oxyacanthae L. 210, Polia chi L. 46, Psodos alpinata Se. 140, trepidaria Hb. 140, Pyrameis cardui L. 133, Theela pruni L. 54, Zephyrus betulae L. 58, quereus L. 58.

Eiablage bei Arsynnis paphia L. 107; Baris granulipenris Tran. (Col.) 222; Callophrys rubi L. 57; Catocala anti- nympha Hb. 287, coneumbens WIk. 287, fulminea Scop. 255, ilia v. osceulata Hulst 287, piatrix Grote 2S7, pro missa Esp. 255, relieta Wik. 288, relieta v. clara Beu-

alei-

tenm. 287, unijuga WIk. 237; Chrysophanus phron Rott. 65, dorilis Hufn. 77, hippotho@ L. 65, virgaureae L. 73; (Coenonympha pamphilus L. 26;

Comacla senex Hb. 50; Culex pipiens L. (Dipt.) 156; Deilephila vespertilio Esp. 206; Lestes sponsa Hansen (Neur.) 140; Lycaena argiades Pall. 90, g. v. poly- sperchon Brestr. 90, argus L. 138, icarus Rott. 153, semiargus Rott. 179; Morimus funereus Muls. (Col.) 100: Selenephera lunigera Esp. 19; Syntomis phegea L. 25; Thaumatopoea processionea L. 324; Theela pruniL. 54; Zephyrus betulae L. 58, quereus L 58.

Eichenborkenkäfer 41. s

Eidauer bei Coenonympha tiphon Rott. 53, bei Lycaena argi- ades Pall. 90.

Eierversand 52.

- VI

Ematurga atomaria |].. 5.

Emmiltis (Aecidalia) planidisca Bastelb. n. spec. 34; subtaeniata Bastelb. n. spec. 34.

Endromis versicolora L., verkehrt in der Tuppe 285.

Endro-is laeteella Schift., Flugzeit 208, 210. 5

Ennomos autumnaria Wernb., g' und Q am Licht 208; fus- cantaria Hw. am Licht 207, 208.

Entedon ovulorum Rbg (Hym.), Schmarotzer bei Lyda (Hym.) 92.

Entstehung der Insektentlügel 4.

Entwickelung der Mücken 157.

Entwickelungsdauer bei Cimbex femorata L. (Hym.) 132; Ste- noptilia pneumonanthes Schleich 217, 222, 229. Entwickelungsgeschichte der Stenoptiliapneumonanthes Schleich

917, 222, 229.

Entwiekelungsgeschwindigkeit, abhängig von der Temperatur, 154, 197,

Ephemeriden (Neur.) 5.

Ephyra pendularia Cl. 67.

Epiblema brunnichiana Froel. 67; luetuosaua Dup. 46 51, 67, Futterpflanze 46, Ueberwinterung 207, Verpuppung 207.

Epiehnopteryx ardua Mn., Fang 324; pulla Esp. 59.

Epienaptera arborea Blöcker 312; ilieifolia L. 312; tremulifolia Hb. 312.

Epinephele hyperantus L. 67; jurtinaL. 12, 148, 207, 284, 295.

Epinephele tithonus L., Aberration 12, 124; Albinismus 12, Ei 11, Flugplätze 11, Flugzeit 12, Futterpflanzen 12, Ueberwinterung 12, Verbreitung 11, Zwitter 123, 151.

Epinephele tithonus ab. albida Russell 12; ab. caeca Tutt 12; ab. excessa Tutt 12: ab. mincki Seebold 12; ab. subal- bida Verity 12.

Epineuronia cespitis F. am Licht 183; ab. ferruginea Höfner am Licht 183.

Epineuronia popularis F. am Köder 1S3, am Licht 183,

Epione apieiaria Schiff. am Licht 132.

Episema scoriacea Esp. am Köder 153.

Erastria deceptoria Sc. am Licht 109.

Erateina aida Druce 105; anormata Bastelb n. spec. 1(5; antipodariaBastelb. n.spee. 98; aroma Druce 105; drucei Th.-Mieg 98; herbertina Dogn. 98; juliata Gn. 95, 99; leptocircata Gn. 98; semiluctuata Th.-Mieg 105; sinuata Saunds. 105; staudingeri Snellen 98; trialbata Bastelb. 105; undulata Saunds. 98: zoraida Dbld. 105

Erebia euryale Esp. 170, 182, ab. philomela Esp. 182.

Erebia glacialis Esp., Flugzeit 324.

Erebia gorge Esp. 117, 182, Flugzeit 324.

Erebia lappona Esp., Aufenthalt 324.

Erebia ligen L. 170, 171, 182.

Erebia manto F. 182, späte Flugzeit 39.

Erebia medusa F. 60; ab. hippomedusa ©. 109, 117.

Erebia melampus Fuessl., Vorkommen 182.

Erebia oeme Hb. v. spodia Stdgr. 109.

Erebia pharte Hb., Vorkommen 182.

Erebia pronoö Esp., Vorkommen 183.

Eresia eleatus Weym. 242.

Eriogaster lanestris L., Eigelege 5l, Flugzeit 5l, Verpuppung 211.

Eristalis tenax L. (Dipt.), ihr Summen 6.

Euckaris ascendens Fr. (Hym.), Vorkommen 190; eynipiformis kossi, Fang 190,

Euchlo@ cardamines L. 51, 106, Zwitter 131.

Euelidia glyphica L. 60; mi C!., Fang 59, ab. explanata Rebel 286, 322. .

Eueosmia certata Hb 51,59,118, Aberration 98, an Berberitze 59, am Köder 51.

Eucosmia certata ab. griseata Bastelb. n. ab. 98; v. simplonica Wackerzapp 98.

Eumenis siehe Satyrus.

Euplexia lueipara L. am Köder 67, am Licht 118.

Euploea crameri Lucas pagenstecheri Hagen 238: erameri sin- garadha Fruhst. n. subsp. 233; erameri tanggerensis Fruhst. 238.

Eurrhypara urtieata L. 59.

Eurymene dolabraria L., am Licht 91, 109, 182.

Eurymene dolabraria ab. atrox Zerny 322.

Euxanthis zoegana L. am Licht 148, 170, 182.

Evergestis sophialis F. 294.

Exapate eongelatella Cl. im November 210.

Exetastes fulvipes Gr.(Hym.), Schmarotzer bei Lyda (Hym.) 93.

Färbung der Insekten 193.

Federmotten, ihre Klassifikation 35, 36.

Fidonia eristataria Plötz 282.

Fledermänse auf der Noctuenjagd 39,51; ihre Schmarotzer. 41.

Fliegen, ihr Flugvermögen 5; Schmarotzer bei Fledermäusen 41.

Flöhe der Fledermäuse 41.

Florfliegen (Neur.), ihr Flugvermögen 5.

Flügel der Strebliden 41.

Flügelgeäder 13, Präparate zur Bestimmung (es Flügelgeäders der Schmetterlinge 52.

Flügellosigkeit, sekundäre 13.

Flügelschuppen als systematisches Hilfsmittel 213.

Flugstellen für Coenonympha arcania L. 25, iphis Schiff. 12; Epinephele tithonus L. 12; Erebia lappona Esp. 324; Lycaena bellargus Rott. 2, icarus Rott. 2.

Flugton 6, 20, der Mücken 6.

Flugvermögen 5.

Flugzeit von Agrotis latens Hb. 260; margaritacea Vill. 107; Callophrys ruhi L. 57, 66; Catocala fulminea Seop. 255; Chrysophanus aleiphron Rott. 65, 67, dispar v. rutilus Wernb.. 66, dorilis Hufn. 70, hippothoö L 65, 66, yphlaeas L. 66, 67, virgaureae L. 73, 17; Coenonympha arcania L. 25, pamphilus L. 26, tiphon Rott. 53: Cyaniris argiolus L. 88; Epinephele tithonus L. 12; Erebia manto F. 39; Eriogaster lanestris L. 51; Hadena. basilinea F. 91: MHeliothis armigera L. 39; Hepialus humuli L. 91; Lampides telicanus Lang 70; Lycaena argiades Pall. 70, ab. eoretas 0. 70, 71, ab. decolorata Stdgr. 71, g. v. polysperchon Bergstr. TI, g. v. vernalis Grund 7l, argus L. 71,138, argyrognomon Bergstr. 139, ab. dubia Schulz 71, arion L,. S7, astrarche Berestr. 79, baton Bergstr. 71, bellargus Rott. ST, coridon Poda ST, ceyllarus Rott. 87, hylas Esp. 79, icarus Rott. 1,79,153, meleager Esp. 79. mini- mus Fuessl. 87, orion Pall. Tl, semiargus Rott. 87, 91, 152, 179; Nemoria viridata L. 233; Paraseotia fuliginaria L. 324; Parnassius apollo L. 39; Phasiane clathrata L. 59; Plusia monetaF.39,210; Polia eanescens Dup. 306; Seoliopteryx li batrix L. 39, 132, Thaumatopoea proces- sionea L. 324” Theela acaciae F. 66, ilieis Esp. 66, pruni L 54, 66, spini Schiff. 66, w-album Knoch 66; Xylina ingrica HS 39; Zephyrus betulae L. 58, 66, quereus L. 58, 66 -

Forfieula aurieularia L (Orth.) 13, 47.

Forfieuliden, Zweck der Zange 13.

Form der Insektentlügel 13.

Frisch, Beschreibung von allerlei Insekten 273.

Fühlerbildung, merkwürdige, bei Athous niger L. (Col.) 249.

Fumea betulina Z. g X erassiorella Brd. 2 4; casta Pall. 5l; comitella Brd. 4, 234, 325; erassiorella Brd., neue Form 234; subflavella Mill., Originale 4.

Futterpflanzen für Acronieta alni L. 46; Agrotis latens Hb. 260, margaritacea Vill. 106 ypsilon Huln. 236; Aporia erataegi L. 46; Arctia casta Esp. 52: Callimorpha do- minula L. 52; Callophrys rubi L. 57: Callosamia promethea Dru. 12; Calymnia pyralina View. 67,91; Ca- radrina pulmonaris Esp. 5l; Catocala fraxini L. 268, fulminea Scop. 255; Cerura fureula Ol. 3: Chrysopha- nus aleiphron Rott. 65, amphidamas Esp. S6, dorilis Hufn. 77, hippotho& L. 65, phlaeas L. 66; Coenonympha arcania v. alt. satyrion Esp. 25, pamphilus L. 26, tiphon Rott. 53; Deilephila vespertilio Esp. 206: Dieranura erminea Esp. 139; Epiblema luctuosana Dup. 46; Epinephele tithonus L. 12; Gortyna ochracea Hb. 46; Lycaena argiades Tall. 130, g. v. poly- sperehon Bergstr. 130, argus L. 138, argyrognomon Bergstr. 146, icarus Rott.154, orion Pall. 153, semiargus Rott. 159; Lyda (Hym.) arvensis Pz. &0, balteata Fall. 93, betulae L. 92, campestris L. 80, depressa Schrk. 92, erythrocephala L. S0, hypothrophica Htg. 80, inanita Vill. 92, pratensis Fabr. 80, pyri Zadd. 92, reticulata L. 80, silvatica L. 93, stramineipes Hrtg. 92; Lymantria monacha L. 269; Nemoria viridata L. 233; Orgyia gonostigma F. 67; Paraseotia fuliginaria L. 323; Plusia modesta Hb. 5l; Polia canescens Dup. 307, chi L. 46; Psecadia pusiella Roem. 5l; Selenephera lunigera Esp. 18; Syntomis phegea L. 28; Taeniocampa opima Hb. 45; Theela pruni L. 54; Trichiura erataegi L. 67; Nanthodes malvae Esp. 302; Xylina ingriea HS. 51, 117; Zephyrus quereus L. 58.

Gastropacha quereifolia L. 46, 67, 71, 108, am Lieht 148. Schlüpfen der Puppen 117, Verpuppung 108.

Gehörsinn bei Insekten 245, 277, bei Schmetterlingen 275.

Generationen bei Callophrys rubi L. 57; Cerura fureula Cl. 3: Chrysophanus phlaeas L. 66: Coenonympha pam- philus L. 26; Lyeaena argyrognomon Bergstr. 139, iea- rus Rott. 1, 153, semiargus Rott. 179; Stenoptilia pneumonanthes Schleich 222; Zephyrus quereus L. 58.

Generationswechsel 232.

Geometra papilionaria L. am Licht 182; vernaria Hb. am Licht 109, 118.

Geotrupes (Col.) sylvatieus Panz. am Köder 86; stercorarius L. am Köder 86.

Geruchsorgan der Schmetterlinge 275.

Geruchsvermögen der Schmetterlinge 275.

Gerüche, ihre Wirkung auf Schmetterlinge 135.

Geschleehtswitterung 171, 219, 220.

Gesichtssinn der Schmetterlinge 275.

Gewohnheiten des Falters: Agrotis latens Hb. 260; Callophrys rubi L. 57: Catocala amatrix Hb. 275, amica Hb. 265, 274, antinympha Hb. 267, 268, 274, 275, badia Grote and Rob. 243, 268, cara Guenee 259, 268,275, cero- gama Guente 275, eoeeinata Grote 268, 275, coneumbens Wik. 259, 268, 274, 275, fraxini L. 275, gracilis Edw. 268, 274, 275, habilis Grote 268, 275, ilia Guence 275, illeeta Wlk, 275, irnnbens Guenee 275, neogama Smith and Abb. 275, paleogama Guencte 274, parta Guente 374, piatrix Grote 268, 275, praeelara Grote and Rob.

IN

274, relieta Wlk. 259, 274, 308, 314, reteeta Grote 268, 275, robinsonii Grote 275, tristis Edw. 268, ultronia Hb. 275, unijuga WIk. 259, 268, 274, vidua Smith and Abb. 268, 275; Chrysophanus dorilis Hufn. 77; Coenonympha arcania L. 25, v. alt. satyrion Esp. 235, iphis Schiff. 12, tiphon Rott. 53 ; Epinephele tithonus L. 11; Lycaena argus L. 138; Thecla pruni L. 54; Ze- phyrus betulae L. 58, quereus L 58,

Gewohnheiten des Lethrus cephalotes Fb. (Col.) 86

Gewohnheiten der Raupe von Agrotis latens Hb. 260, marga- ritacea Vill. 106; Catocala amatrix nurus WIk. 275; Chrysophanus dorilis Hufn.77, hippotho& L. 65,73, phlaeas L. 66; Coenonympha tiphon Rott. 53; Luceria virens L. 61; Lyeaena argiades Pall. und g. v. polysperchon Bergstr. 90, icarus Rott. 153; Polia chi L. 46; Sele- nephera lunigera Esp. 18; Zephyrus quercus L. 58.

Gletscherfloh 4.

Gnophos dilucidaria Hb. 183, am Licht 109, 132; obseuraria Hb. 56

Gnophria rubricollis L. am Licht 148,

Gonodela eretiguttata Bastelb. n. sp. 282; subaria Bastelb. 232.

Gonopteryx aspasia Men. 243, eleobule Hb. 244, cleopatra L. 243, clorinde 244, farinosa Z. 243, rhamni L. 106, 243, 284, späte Flugzeit 67.

Gortyna ochracea L., Futterpflanzen 46, nie am Köder 46, 170, Verpuppung 46, 170, 183.

Grammesia trigrammica Hufn. 107, Aberration 194, am Köder 21.

Grammesia trigrammica ab. approximans Haw. 71, ab. bilinea Hb. 71, 194, ab. semifuscans Haw. 194.

Graphipterus serrator Forsk. (Col.), Lebensweise 221.

Größe der Insektenflügel 13.

Grylius domestieus L, Regenerationsvermögen 72.

Gynandromerphismus bei Epinephele tithonus L. 123, 131, Euchlo& cardamines L. 131, Lycaena argus L. 71, Pieris daplidice L. 131.

Gyrocampa stagnalis Heymons (Hym.) 194.

Habrosyne derasa L. am Lieht 132, am Köder 109, 117.

Hadena adusta Esp. 51, 59, am Köder 59, 72.

Hadena basilinea F. 107, Flugzeit 91, am Licht 91, 132.

Hadena gemmea Tr., Futterpflanzen 183, am Köder 183.

Hadena lateritia Hufn. am Köder 149.

Hadena monoglypha Hufn. am Köder 148, 149, 183; ab. infus- cata B.-W. 39.

Hadena porphyrea Esp. am Köder 183, am Licht 210.

Hadena rurea P. am Licht 132, ab. alopecurus Esp. am Köder 132.

Hadena secalis Bjerk. am Köder 149, 183; ab. leucostigma am Köder 148, 149, 183; ab. nietitans Esp. am Köder 183; ab. secalina Hb. am Köder 149, 183.

Hadena sordida Bkh. am Köder 117.

Hadena sublustris Esp. am Licht 109, 183.

Haftborsten, ihr Zweck 5.

Halteren der Dipteren 6, 20.

Hautdrüsen bei Insekten 116.

Hautfarbe bei Käfern und Schmetterlingen 116, 121.

Heliaca tenebrata Sc. 60.

Heliophile Raupen 324.

Heliothis armigera L., späte Flugzeit 39, merkwürdiges Vor- kommen 207.

Hemaris fueiformis L. 5, seabiosae Z. 109.

Hepialus carna Esp. 117, 132, 324, Vorkommen 183.

lit secnseb les de Geer v. gallieus Ld., Vorkommen 29.

Hepialus humuli L. 67, massenhafter Flug 325, Flugzeit 91.

Hepialus humuli v. thuleus Crotch (v. hethlandica Stgr.) Stamm- form? 152, 195.

Hereulia glaueinalis L. am Lieht 148, 182.

Herminia tentaeularia L. am Lieht 132,

Hesperia cacaliae Rbr. 117; malvae L. 59; pyrophorus, Haut- et der Raupe 122; uraniae, Hautsekret der Raupe

Hesperiidae 302.

Heterogen 232.

Heteropteren (Wanzen), Deckflügel 5.

Heterusia repagulata Bastelb. n. spec. 105.

Himera pennaria L. am Licht 210.

Hippodamia- (Col.) Arten bei Sommerfeld (Lausitz) 236.

Hister cadaverinus Hoffm. (Col.) am Köder 70.

Hister quadrimaeulatus L. (Col.) am Köder 70.

Hoploeryptus mesoxanthus Ths. (Hym.) 311.

Hummelleben 42.

Hyalina lucasi Trautmann n. spec. 316.

Hybridation bei Psychiden 3, ihre Erzielung 3; bei Zy- gaenen 116.

Hybriden von Fumea betulina Z. 3 X erassiorella Brd. 2 4; Pachytelia unieolor Hufn. g' X villosella 0. 2 4.

Hybriden-Verzeichnis 35.

Hydrilla palustris L. am Licht 109.

Hydroeeia nietitans Bkh. am Köder 183, 207.

Hydrophilus piceus L. (Col.), Beschreibung von Frisch 273.

Hylobius pineti L. (Col.), Fang 190.

Hyloieus pinastri L. am Licht 109, 148, Suchen der Puppen 46.

Hymenopteren, Haftborsten 5.

Hypena proboseidalis L. am Köder 149, am Licht 118.

Hyphantidium terebrella Zk. am Köder 183.

Elypocala andremona Cramer am Licht 304.

Hypochaleia ahenella Hb. am Liebt 148.

Hyppa reetilinea Esp. am Köder 149, am Licht 117.

Ichneumon fabrieator Gr. (Hym.), Schmarotzer bei (Hym.) 93.

Ichneumoniden, Bestimmungswerke 289, 309, Sammeln derselben 289, 309, Töten 289, 309, Präparation 289, 309, Anlage der Sammlung. 288.

Ineurvaria oehlmanniella Tr., Fang 324; Fang 324.

Insekten, ihre Einteilung nach Swammerdam 273.

Insekten und Vögel 205.

Insektenflägel, Aderung 13, Entstehung 4, Form und Größe 13, Pigmentierung 13, Zahl 5. y

Jagdausflug auf nordamerikanische Catocalen 313.

Käferfang 70, 86 100.

Kalk, sn Einfluß auf die Variabilität der Schmetterlinge 138, 162.

Kafnibalismus der Raupe von Lycaena argiades Pall. 100. Zephyrus quereus L. 58.

Keplerbund 222, 286.

Köder für Käfer 70.

Köderbereitung 6.

Köderfang: Aufzählung der Arten, welche zum Köder kommen: 46, 51, 59, 60, 67, 71, 72, 109, 117, 132, 148, 149, 170, 183, 207. 208, 210.

Köderfang im November 6, bei Vollmond 117, Vorbedingungen eines reichen Anfluges 39, 40.

Ködern der Käfer 70.

Köderschnüre 46.

Kokon bei Valeria jaspidea Vill. und oleagina F. 55.

Kopula bei Cerura furcula Cl. 3, bei den Psychiden 3, zwischen verschiedenen Zygaenen-Arten 164, 135.

Kopulation, ihre Erzielung 3.

Kreuzungen, ihre Erzielung 3.

Kriterium einer Species 40.

Kuckucksspeichel 220.

Laemosthenes eomplanatus (Col.), Aufenthalt 233.

Lampides boetieus L. bei Fiume 88; telicanus Lang bei Aeram 70.

Larentia adaequata Bkh. 183, am Licht 118, 148.

Larentia albieillata L. am Köder 117, am Licht 118.

Larentia albulata Schiff. am Licht 109; alchemillata L. am Licht 118, 131; aptata Hb. am Licht 118, 148; autum- nalis Stroem. am Licht 109, 118.

Larentia berberata Schiff. am Köder 170, am Licht 109, 148, 183.

Larentia caesiata Lang am Licht 148, Vorkommen 183 ; capitata HS. am Licht 109; ceucullata Hufn. am Licht 109, 148.

Larentia dilutata Bkh. 210; dotata L. am Licht 231.

Larentia ferrugata Cl. am Köder 59, 170, 183, am Licht 91; ab. spadicearia Bkh. am Licht 109; firmata Hb. 1835; fulvata Forst am Licht 148, 182.

Larentia immanata Hw. 208, am Köder 207, am Licht 183,.210.

Larentia lugubrata Stgr. 132; luteata Schiff. am Licht 118.

Larentia montanata Schiff. 117, 182, am Licht 109, 118, 148.

Larentia nebulata Tr. 117.

Larentia ocellata F. 183, am Licht 109, 170; olivata Bkh. am Licht 148.

Larentia pomoeriaria Ev. an Baumstämmen 207; procellata F. am Licht 109, 132.

Larentia quadrifasciaria Cl. am Licht 118.

Larentia rivata Hb. 91; ruberata Frr. am Licht 91, 131.

Larentia salicata Hb. 183; silaceata L. am Licht 109; sociata Bkh. 59, am Licht 170; sordidata F. ab. fusco-undata Don. am Licht 148; suffumata Hb. 51, 91, Beob- achtung 276.

Larentia tristata L. am Licht 91; turbata Hb. am Lieht 91.

Larentia verberata Sc., Höhenform 183; vespertaria Bkh. 183, am Licht 183; viridaria F. am Licht 109.

Larinus Germ. (Col.), Hautsekret 122; albolineatus Cap., Lebens- weise 221. ,

Lasiocampa quercus L., Aberration 5, 67, 302, Flugzeit 219, Geschlechtswitterung 171, 220, Liebesleben 171, 219.

Lasiocampa quercus v. alpina Frey 5, 67; v. callunae Palmer 302; v. meridionalis Tutt, Raupe 302; ab. olivacea Tutt 302; ab. olivaceo-fasciata Cockll. 302; ab. paradoxa Frings 302; v. viburni Gn., Raupe 302.

Laspeyria flexula Schiff. am Köder 149.

Larven der Blattwespengattung Lyda 30, 92.

Lebensdauer bei Insekten 216.

Lebensweise der Blattwespengattung Lyda 72, 80, 92, der Raupe von Chrysophanus dorilis Hufn,. 77, Luceria virens L. 61.

Lebensweise von Lethrus cephalotes Fabr. (Col.) 86; Meco- nema varıum F. (Orth.) 224; Nemoria viridata L. 233; Parasecotia fuliginaria L. 323; Stenoptilia pneumonanthes Schleich 217, 222, 229.

Lemonia dumi L., Zucht 51, 109, 210.

Lentikeln 54, 114, 265.

Lyda

splendidella Hein.,

Lepidopteren, Haftborste 5.

Lepisma saccharina (recte um) vermögen 72,

Leptidea brevipennis Muls. (Col.) in Berlin 141.

Lestes sponsa Hansen (Neur.) Eiablage 140,

Lethrus cephalotes Fabr. (Cel.), Aufenthalt und Gewohnheiten 86, 100.

Leucania andereggi B., Flugzeit 91; eomma-L. am Licht 109, 132; conigera F, 5l, am Lieht 132: impura Hb. am Köder 117, am Licht 118, 132; lithargyria Esp. am Köder 183, am Licht 132.

Libellen, Entwickelungsgeschichte und Lebensweise 322, merk- würdiges Verhalten 140.

Libellula depressa L. (Neur.), Hautsekret 122, Vorkommen 140; depressiuscula Selys, merkwürdiges Verhalten 140; qua- drimaeulata ab dittrichi Scholz 322.

Libythea celtis Esp., Gewohnheiten des Falters 294.

Liehtfang 26, 39, beim Mondschein 40, 117, Arten welche zum Lieht kommen: 91,108 109, 117, 118, 131, 132, 148, 170, 182, 183, 207, 210.

Liebesleben der Spinner 171, 220, 229

Limenitis populi L., Gewohnheit des Falters 276.

Limenitis populi bucovinensis Horm. 50; populi enapius Fıuhst. n. subsp. 50; p. eumenius Fruhst. n. subsp. 50; p. goliath Fruhst. n. subsp. 50, p. ussuriensis Stdgr. 50.

Limenitis sibilla L. 148, 170.

Limneria armillata Gr. (Hym.), Schmarotzer bei Lyda (Hym.) 93.

Liophloeus nubilus F. (Col.), Hautsekret 122.

Lithomanthis carbonaria Zittel, drei Flügelpaare 5.

Lithosia cereola Hb. am Licht 182; complana L. 67, am Licht 152; lurideola Zinck. 67, 71, 109, am Licht 132, sororcula Hufn., am Licht 91, Ueberwinterung 60.

Lithurgus dentipes Sm. (Hym.), Nest mit Vorratskammern 42,

Lixus cleoniformis Rttr. (Col), Lebensweise 221; paraplecticus L., Puder 116, 122.

Lokalfaunen, ihr Wert 191.

Lokalrassen von Appias leptis Feld. 233; Argynnis adippe L. 69, amathusia Esp. 214, hecate Esp. 194, 214, pandora Schifferm. 69, paphia L. 69; Chrysophanus virgaureae L. 194; Delias belisama Cram. 238; Euploea crameri Lucas 238; Limenitis populi L. 50; Macroploea corus 238; Melitaea phoebe Ochs. 194; Miletus Hübner 85, 91; Neptis hylas L. 98, 238; Papilio hector L. 49, liris Godt. 49; macareus Godt. 238, polydorus L. 49, polyphontes Boisd. 49; Salatura panda Godt. 238; Satyrus briseis L. 195; Symbrenthia hippoclus de Nicev. 238, hypselis Godt. 238; Tanadeia palguna Moore 238; Troides helena L. 238; Waigeum ribbei Röber 113.

Lophopteryx camelina L. 60, 91, am Licht 91, 132, ab. giraffina Hb. 60.

Lophopteryx euculla Esp. am Köder 117.

Luceria virens L., Suchen der Raupe und Puppe 6l.

Lycaena alecon F. 148, Abänderung auf Kalkboden 162, Grund des Verschwindens 53, Ueberwinterungs-Stadium 239, Vorkommen 88, 148,

Lycaena amandus Schn., Vorkommen SS.

Lycaena anteros Frr., Vorkommen 88.

Lyeaena arcas Rott., Abänderung auf Kalkboden 162,

Lycaena argiades Pall., Aberration 71, 78 130, Ei 90, Eiablage 90,Eidauer 90, Flugzeit 70, 86, 130, Futterpflanzen 90, 130, Gewohnheiten der Raupe 90, 100, Kannibalismus 100, Puppe 129, Raupenstadien 114, 121, 129, Verbreitung 78, Verpuppung 129.

Lycaena argiades ab. coretas O,, eine besondere Art? 70, 71, 78,130, Flugzeit 70, 78, 130, ab. deeolorata Stgr. 71, 78, ab. depuneta Hirschke 78, g. v. vernalis Grund TI, 78, 79

Lycaena argiades g. v. polysperchon Bergstr., Aberration 130, Flugzeit 70, 71, 78, 86, 130, Futterpflanzen 86, 100, 130, Ueberwinterung 100, 121, Verpuppung 100, 129.

Lycaena argus L. (— aegon Schiff.) 2, 294, Aberration 138, bei Agram 71, Ei 138, Eiablage 138, Flugzeiten 71, 138, Futterpflanzen 1338, Gewohnheiten des Falters 138, Puppe 138, Ueberwinterung 138, Zucht 138, Zwitter 71.

Lycaena argus ab. caeca Grund n. ab. 71; ab. 2 caeruleo- cuneata Ebert 139; v. corsiea Selys-Longeh. 139; ab. leodorus Esp. 139; ab. obscura Grund n. ab. 7.

Lycaena argyrognomon Bergstr. 2, Aberration 146, 147, Flug- zeit 139, Futterpflanzen 146, Generationen 139, Puppe 146, Ueberwinterung 139, Verbreitung 38, 139, Zucht 146.

Lycaena aıgyrognomon ab. brunnea Spuler 147; ab. 2 callarga Stdgr. 85; ab. dubia Schulz 147, 294, bei Agram Tl, 147; ab. lutea Caradja 147.

Lycaena arion L., Aberration 88, Abänderung auf Kalkboden 162, Drüse 114, 265, Flugzeit 57, 132, Kannibalismus 100, Puppen in Ameisen-Nestern 214, Raupe 114, 265.

Lyeaena arion ab. impuncta Courv. 88; ab. obseura Chr. 5, 38; ab. punctifera Grund n. ab. SS.

Lycaena astrarche Rott, Abänderung auf Kalkboden 162,

£ Aberration 79, Flugzeiten 79, 294,

Lycaena astrarche ab. callida Bell. 79, ab. ornata Stgr. 79.

L. 47, 72, Regenerations- b} {>}

Lycaena baton Bergstr., Abänderung auf Kalkboden 162, bei Agram 71.

Lyeaena bellargus Rott. 294, Abänderung auf Kalkboden 162, Aberration 87, 162, Flugstellen 2, 294, Flugzeit 37.

Lycaena bellargus ab. arcuata Courv. 37; ab. ceronus Esp. 162; ab. krodeli Gillmer 30; ab. puncta Tutt 87; ab, punctifera Obth. 87, 162.

Lycaena corydon Poda 148, Abänderung auf Kalkboden 162, Aberration 87, 88, Flugzeit 87.

Lycaena corydon ab. 2 aurinata Tutt ST; Tutt 37; ab. tiphys Esp. 87.

Lycaena cyllarus Rott. 60, Aberration 57, Flugzeit S7, Ver- breitung 313.

Lyeaena cyllarus ab. @ andereggi Riihl 87, ab. dymus Berg- str. 87; ab. tristis Gerh. 87.

Lycaena damon Schiff. ab. gillmeri Krodel 30.

Lycaena euphemus Hb., Abänderung auf Kalkboden 162, Vor- kommen 88.

Lycaena hylas Esp. 109, Aberration 79, 'Flugzeit 79, 148, 170, 294.

Lycaena hylas ab. nigropunetata Wheeler 79.

Lycaena icarus Rott. 1, 11, 79, 208, das typische 2 1. 11, Abänderung auf Kalkboden 162, Aberration 1, 154, 178, Eiablage 153, Flugzeit 1. 79, 109, 153, 210, Futterpflanzen 153, Generationen 1, 153, Gewohnheiten der Raupe 153, Ueberwinterung 153.

Lycaena icarus Rott. forma aestiva Gillmer 1; alexis Hb. Synonym 10, ab. © amethystina Gillmer n. ab. 10, 162; ab. 2 angulata Tutt 11; ab. areuata Courv. 79; ab: 2 caerulea Fuchs 1, 11, 79, 162; ab. Q caeruleo-euneata Tutt 11; ab. caerulescens Wheeler 11; ab. 5 celina Aust. 11, 79; ab. clara Tutt 2, 11; ab. crassipuncta Coury. 154; ab. excessa Gillmer n. ab. 178; ab. fusca Gillmer n. ab. 11; ab, © glauca Maassen Synonym 2; ab. icarinus Scriba 79, 162, 178; ab. Q icarus-cuneata Gillmer 11; ab. iphis Meigen 79, 178; ab. iphis Baum- hauers Mus. nomen nudum 11; ab. 2 iphis-cuneata Tutt hinfällig 11 Fußnote; ab. kashgharensis Moore = yar- kandensis Moore 2; ab. nana Grund n. ab. 79; ab. ob- soleta Gillmer 178; ab. pallida Tutt 11; ab. parvipunc- ta Courv. 154; ab. persica Bien. 178; ab. polyphemus Esp. melanotoxa Pine,-Marott arcwata Weymer arcua Fayre 154; ab. pusillus Gerh. 178, ab. quadri- puncta Coury. 178; ab. quinquepuncta Courv. 178; ab. radiatus Courv. 178; ab. 2 rufina Obth. 79; ab. semi- arcuata Courv. 79, 154; ab. 2 semielara Tutt 11; ab. semipersica Tutt 178; ab. striata Tutt 154; ab. tripuneta Gourv. 178; forma vernalis Gillmer 1.

Lycaena jolas O., Vorkommen 88.

Lyeaena Biel easet Esp., Abänderung auf Kalkboden 162, Flug- zeit 79,

Lycaena meleager ab. steeveni Tr. 79.

Lycaena minimus Fuessl. 60, 90, 109, Flugzeit 59, S7.

Lycaena minimus ab. obsoleta Tutt 37.

Lycaena optilete Kn., Grund des Verschwindens 52.

Lyesena orbitulus Prun., silberblaues 2 324.

Lycaena orion Pall., bei Agram 71, Futterpflanzen 153, Vor- kommen 153.

Lycaena orion ab. nigra Rühl 71, ab. ornata Stgr. 71.

Lycaena sebrus B., Vorkommen SS.

Lycaena semiargus Rott., Aberration 312, Dufttube 265, Ei 189, Eiablage 179, Flugzeit 78, 91, 132, 179, Futter- pflanzen 179, 189, 266, Generationen 179, Gewohnheiten der Raupe 266, Honigdrüse 265, 266, Literatur 179, Puppe 287, 312, Raupe 189, 265, Ueberwinterung 265, 266, 2S6, Variation 312, Verbreitung 178, Verpuppung 287.

Lycaena semiargus y. bellis Freyer 313; ab. caeca Fuchs 313; v. montana Meyer-Dür 313; ab. striata Wheeler 313.

Lycaenidae 54, 312; der Umgebung von Agram 66, 70, ST.

Lycaenidenraupen, Drüse '1!4, 115, 121, 239, 265, Dufttube 265, Lentikeln 54, 265, Myrmekophilie 47.

Lyda (Hym.), Lebensweise von arvensis Pz. 80; balteata Fall. 93; betulae L. 92; campestris L. 80; depressa Schrk. 92; erythrocephala L. SO; flaviceps Retz. 92; hypo- trophica Htg. SO; inanita Vill. 92; larieis Gir. 92; pratensis Fabr. 80; pyri Zadd. 92; retieulata L. 80; silvatica L. 93; stramineipes Htg. 92.

Lygris populata L., am Licht 109, 148, 183.

Lygris prunata L., am Licht 118, 131, 182.

Lygris prunata ab. annexa Spitz 322.

Lymantria dispar L., Liebesleben 286, Seltenheitin Krieglach 46, 51.

Lymantria monacha L. 148, 183, Futterpfanzen 269, 296, am Licht 153, Zucht 269.

Lymantria monacha ab. eremita. O. 5, 39.

Miacroglossa croatica Esp. 5; stellatarum L., Färbung der Raupe 200.

Maerolenes (Col.) bimaculata Rossi 323, var. econfluens Weise 323, var. gallica Schulz n. var. 323; var. immaculata Schulz n. var. 323; var. quadrimaculata Schulz n. var. 823; var. salicariae Men. 323; var. trimaculata Schulz n. var. 323.

Macroploea corus defiguratus Fruhst. n. subsp. 238; corus pa- vellae Zincken 238.

ab. marginata

Macrothylacia rubi L. 46, 51, 71, Liebesleben 171, Ueber- winterung 45, 106.

Madopa salicalis Schiff., am Licht 109.

Malacosoma neustria L., am Licht 131.

Mamestra advena F. 59, am Lieht 91, 109, 117, 131.

Mamestra brassicae L. 60, 210.

Mamestra contigua Vill., am Köder 72, am Licht 109.

Mamestra dentina Esp., am Köder 72, am Licht 109.

Mamestra dissimilis Knoch am Köder 67.

Mamestra genistae Bkh., am Köder 149, am Licht 91, 109.

Mamestra leueophaea View., am Köder 67, am Licht 91.

Mamestra nebulosa Hufn., am Köder 117.

Mamestra oleracea L., II. Generation 208, am Köder 67, am Licht 109.

Mamestra persicariae L., am Licht 109, 118.

Mamestra pisi L., am Köder 109, 183, am Licht 109.

Mamestra retieulata Vill. 109, am Licht 91, 109.

Mamestra serena F. am Licht 109.

Mamestra thalassina Rott., II. Generation 207, am Köder 59, 72, 207, am Licht 91.

Mamestra tineta Brahm., am Licht 109.

Mania maura L., Reif der Puppe 122, Stellung im System 122.

Mantis religiosa L. (Orth.), Regenerationsvermögen 72.

Massenhaftes Auftreten von Schmetterlingen 301.

Mauerbienen 311.

Meconema varium F. (Orth.) 220, Lebensweise 224.

Megachile tagopoda L. (Hym.), Wohnung 67.

Melanargia galatea L. 255; ab. leucomelas Esp. 284, 295; v. procida Herbst 234, 295; v. tureica B. 284.

Melanismus 5, 124, bei Arcynnis paphia L. 317, 322, Ur- sachen 5, 58.

Melitaea athalia Rott. 109, 132, 284; aurelia Nick., Größe 284; einxia L. Größe 284; eynthia Hb. 132; dietynna Esp. 109; didyma ©. 284,' Größe 295; v. alpiua Stgr. >.

Melitaea phoebe koios Fruhst. n. subsp. 194; phoebe lokris Fruhst. n. subsp. 194.

Melolortha (Col.) vulgaris L. 180; v. hippocastani F. 180; v. aceris-pectoralis 180.

Merodon equestris F. (Dipt.) 302.

hie: mercator Gr. (Hym.), Schmarotzer bei Lyda (Hym.)

Metopsilus poreellus L. am Licht 109, Verpuppung 132.

Miana bicoloria Vill., II. Generation? 207, am Köder 149.

Miana strigilis Cl., am Licht 109; ab. latruneula Hb. am Köder 117, am Licht 117.

Miletus anacletus Feld. 85.

Miletus apelles F. 91; apelles praeelarus Fruhst. n. subsp. 91.

Miletus doleschalli Feld. 85; doleschalli alix Smith 35; d. medocus Fruhst. n. subsp. 85; d. theon Feld. 85; d. theonides Smith 85; d. theophanes Smith 85.

Miletus dryope Smith 85.

Miletus eueletus Druce 85 ; eucletus eratosthenes Fruhst. n. subsp. 85; e. menandrus Fruhst. n. subsp. 85; e. sabj- rius Fruhst. n. subsp. 91.

Miletus polycletus L. 91,92; polyeletus atromarginata Druce 91; p- brunnea Druce 92; p. epieletus Felder 91; p. hy- laithus Fruhst. n. subsp. 91, 92; p. kaystrus Fruhst. n. subsp. 91, 92; p. linos Fruhst. n. subsp. 91, 92 ; p. menyllus Fruhst. n. subsp. 91; p. oineus Fruhst. n. subsp. 91; p. rex Boisd. 91, 92.

Miletus pretiosus Grose Smith 85; pretiosus aristobul Fruhst. n. subsp. 85.

Miletus pythias Feld. 99; pythias werneri Frubst. n. subsp. 99.

Miletus siren Grose Smith 85; siren eugyppius Fruhst. rn. subsp. 35. :

Miletus-Species von Australien 99; vom Papua Gebiet 99; der Molukken 9; der Sunda-Inseln 99.

Mimikry (Schutzfärbung) 193.

Minoa murinata Sc. am Licht 109.

Minois siehe Satyrus.

Miselia oxyacanthae L., Ei 210; am Köder 207, 210, am Licht.

210.

Molops terricola Fabr. {Col.), am Köder S6.

Molytes germanus L. (Col.) Puder 117.

Morimus funereus Muls. (Co].) Eierablage 100, Fang 100.

Mücken, ihr Flugton 2, 20, 21; Nahrung der Larven 157.

Musciden (Dipt.), Flugvermögen 13. °

Myelois cribrella Hb., am Licht 109.

Myrmekophilie der Lycaenidenraupen 47.

Myrmeleon formicarius L. (Neur.), Lebensweise 211, Zwischen- form 234.

Nahrung ler Mückenlarren 157.

Neerodes littoralis L. (Col.) am Köder S6.

Neerophorus (Col.) germanieus L., humator Fabr., mortuorum Fabr., ruspator Er., vespillo L., vestigator Herschel am Köder 86.

Nemeobius lueina L. 59.

Nemognatha chrysomelina.F. (Col.) Lebensweise 221.

Ne L., Aberration, Lebensweise, Systematik 233,

Nemoria viridata ab. caerulescens Burrow 234; ab. concavilinea Burrow 234; ab. olivaceo-marginata Burrow 234; ab. rufotineta Burrow 234.

XI

Nemotois metallicus Poda ab. aerosellus Z, 170.

Neo-Larmarckismus 293.

Neotenie 132.

Neptis hylas L. 98, Formen 98.

Neptis hylas celebensis Hopf. 238; hylas saleyra Fruhst. n. subsp. 238.

Nipteria sibylla Warr. ab. gorgoniata Bastelb. n. ab. 106; ab. intermedia Bastelb. n. ab. 106.

Niststätten der Rubus-Bewohner 206.

Nomenklatur-Entgleisungen 222.

Nomenklatur-Fragen 322.

Nomophila noetuella Schiff.,, am Licht 148, 210.

Notocelia roborana Tr., am Licht 118.

Numeria pulveraria L., am Licht 109.

Oberea linearis L. (Col.) ein Schädling des Walnußbaumes 41.

Ocneria siehe Lymantria.

Odezia atrsta L. am Licht 109.

Oeonistis quadra L., am Licht 183, 210.

Ohrwürmer, Deckflügel 5, 13, Zweck der Zange 13.

Olethreutes dimidiana Sodof, am Köder 117, am Licht 118.

Olethreutes rivulana Se., am Licht 170.

Olethreutes salicella L., am Licht 131.

Olethreutes striana Schiff., am Licht 132.

Olethreutes variegana Hb. am Licht 118.

Opistograptis luteolata L., am Licht 109.

Optimum 39, 47.

Orenaia alpestralis F., Fang 182, 324, Gewohnheit 324.

Orenaia rupestralis Hb. (andereggialis HS.) Fang 324.

Oreopsyche mediterranea Led., Fang 324, Schlüpfzeit 234.

Orgyia antiqua L. 46, im Oktober 210.

Orgyia gonostigma F., Futterpflanzen 67.

Orina tristis (Col.), Aufenthalt 190.

Orrhodia rubiginea F., am Köder 5l, 67.

Orrhodia vaccinii L., am Köder 6, 46, 51, 207, später Flug 6.

Orrhodia vaceinii ab. mixta Stgr., am Köder 207.

Ortholitha bipunctaria Se., am Lieht 170; cervinata Schiff., am Licht 210; limitata Sc. 60, am Licht 109, 183; moeniata Se., am Licht 133.

Orthopteren, Deckflügel 5.

Orthosia eircellaris Hufn. 149, am Köder 207, 210; ab. ferru- ginea Hb., am Köder 207.

Orthosia litura L., am Köder 183, 207; lota Cl., am Köder 207, nitida F., am Köder 185.

Oryctes nasicornis L. var. grypus (Col.) 180.

Osmia Latr. (Hym.), Zellenbau 42, 311.

Osmia aurulenta Panz., Niststätten 311; bicolor Schrank, Niststätten 3ll; leucomelaena K., Rubusbewohner 311.

Otiorrhynchus (Col.) ligustiei L., niger F., raucus Fb., Haut- sekret 122.

Oxythyrea stictica L. (Col.), Aufenthalt 190.

Pachnobia rubricosa F., am Köder dl.

oe. Hufn. 4, 67, 117; unieolor g' X. villosella

b 4.

Pachytelia villosella O., Schlüpfzeit 234.

Pamene regiana Z., Verpuppung 207.

Pammixie 9.

Pamphila palaemon Pall. 91.

Pandemis cinnamomeana Tr., am Licht 1S2; corylana F., am Köder 183, am Licht 183; heparana Schiff, am Licht 183.

Paniseus (Hym.) fuseicornis Hgr. und testaceus Gr. Schmarotzer bei Lyda (Hym.) 93.

Panthea coenobita Esp. am Licht 148.

Papilio, Flug 13.

Papilio agestor matsumurae Fruhst. n. subsp. 282,

Papilio bianor Cr. 251; v. maackii Men. 231; g. vern. raddei Brem. 231.

Papilio heetor heroicus Fruhst. n. subsp. 49.

Papilio liris aberrans Butl. 49; liris damaricus Fruhst. n. subsp. 49; liris gaetus Fruhst. n. subsp. 49; 1. na- vigator Fruhst. n. subsp 49; 1. pallidus Rothsch.

50; 1. senescens Röber 50; 1. verifiecatus Fruhst. n. subsp. 50; 1. wetterensis Rothsch. 49, liris gaetus forma pseudoliris nova Fruhst. 49.

Papilio macareus Godt. albinovanns Fruhst. n. subsp. 238.

Papilio machaon L., ausstülpbare Drüse 301.

Papilio machaon v. sphyrus Hb. 295.

Papilio nobilis Rrg. 2 246.

Papilio podalirius L. 51, Saison-Dimorphismus 230; v. zan- claeus Z. 230, 284.

Papilio polydorus albosignatus Fruhst. n. subsp. 49; p. naissus Frubst. n. subsp. 49.

Papilio polyphontes aipytos Fruhst. n. subsp. 49; p. Frubst. 49; p. lingonus nocles Fruhst. 49; p. Fruhst. n. subsp. 49.

Pararge aegeria L. 9; aegeria camoena Fruhst. n. subsp. 9; a.. egerides Stgr. 9; a. egestas Fruhst. n. subsp. 9; a. fortunata 9.

Pararge hiera F. 9, 67, ‘91; hiera ominata Fruhst. 9, 29; h. praegraudis Fruhst. n. subsp. 9.

Pararge maera L. 109, 182; ab. adrasta Hb. 294, 295.

Pararge megaera L. 295.

extensus Fruhst. n. subsp. 49; p. pha= roseus Obth. 49; p. sejanus

XI

Parascotia fuliginaria L. 208, Flugzeit 324, Futter 323, Lebens- weise 323, Puppe 324, Puppenruhe 324, Verpuppung 323, Zucht 323.

Parasemia plantaginis L. 46, 117; ab. hospita Schiff., Vor- kommen 149.

Parasiten der Fledermäuse 41.

Parnassius apollo L. 148, 171, 210, späte Flugzeit 39, Reif der Puppe 122.

Parnassius apollo ab. novarae Obtk., ein weiteres Exemplar 141.

Parnassius apollo vinningensis Stichel 232; v. eiffelensis Aus- taut synonym 232; ab. weskampi ungültig 232.

Paruassius delius Esp., ohne rote Augenflecke 141.

Parnassius delius v. styriacus Fruhst., Vorkommen 183.

Parnassins mnemosyne L.17, 109, 132, Fluggebiet 183, Ueber- winterung 60.

Parnassius mnemosyne athene Stichel 17; m. dinianus Fruhst. n. subsp. 17; m. hartmanni forma umbratilis nova Fruhst. 17: m. melaina Honr, subsp. nec aberr. 18: m. mesoleucus Fruhst. n. subsp. 18; m. minor Rebel 72: m. nebrodensis Turati 17: m. parvus Stichel 18: m. si- lesiacus Fruhst. n. subsp. 17: m. turatii Fruhst. n. nom. 17: m. vernetanus Fruhst. n. nom. 17.

Pendulations-Theorie 41, 301.

Pentodon ferrantei Rttr. (Col.), Lebensweise 221.

Pereute charops peruviana Hopffer 242; leucodrosime beryllina Fruhst. 242.

Pergesa siehe Chaerocampa.

Perixera praetermissa Bastelb. n. spec. 38.

Perla maxima Sp. (Neur.), Vorkommen 184.

Petilampa arcuosa Haw., nie am Köder, häufig zum Licht 46, 132, 170, 182.

Petrodava albosignata WIk. und olivata Warr. 282.

Phalacropteryx calberlae Heyl. 234; graslinella B., Sack 234; praecellens Stgr. 254

Phalera bucephala L., kleine Raupen im Oktober 210.

Phasiane clathrata L., Flugzeit 59, am Licht: 91.

Phibalapteryx vitalbata Hb. 56.

Philosamia eynthia Drau. in Wien 194, 212.

Phloeosinus cedri Bris. (Col.), Fraßfigur 41.

Phlyetaenodes verticalis L. am Licht 109.

Phoeosia dietaeoides Esp. am Licht 109

Photoplastizität 41.

Phragmatobia fuliginosa L. 46, 106.

Phyllopertha agrestis (Col.), Aufenthalt 184.

Phylloxera vastatrix auf Sardinien 61.

Pieris brassicae L. 284, massenhaftes Auftreten 124, 144, grüne Flecke auf den Flügeln 269, 296, Fütterungsversuche 124, Ursashe der Vermehrung 248, Wanderzüge 124, 248.

Pieris callidice Esp. 213.

Pieris daplidice L. 295, Zwitter 131.

Pieris freyeri Seudder 213.

Pieris napi L. ab. bryoniae 0.5, 15, 185, Stammform? 199.

Pigmentierung der Insektenflügel 13.

Pimpla examinator Gr. (Hym.), Schmarotzer bei Lyda (Hym.) 9.

Pionea lutealis Hb. am Licht 148; pandalis Hb. 60, am Licht 9L; prunalis Schiff. 117, am Licht 131; stachydalis Germ. am Licht 109, 118.

Plagiographus st.-pierrei Cho!. (Col.), Verpuppung 222.

Plastenis subtnsa F. 183.

Platyptilia gonodacetyla Schiff. am Köder 183, am Licht 148.

Platypus eylindrus var. cylindriformis Reitt. (Col.) 41.

Plusia ain Hochenw. am Licht 148.

Plusia bractea F. 117, 149, am Licht 132,, 148 182.

Plusia chrysitis L. 71, am Köder 117, am Licht 109, 132, 183: ab. juneta Tutt am Licht 109, 183.

Plusia chryson Esp. am Licht 148.

Plusia gamma L. 208, Gewohnheiten des Falters 276.

Plusia jota L. 60, am Licht 132.

Plusia modesta Hb. 59, 71, Futterpflanze öl.

Plusia moneta F., späte Flugzeit 39, 210.

Plusia pulchrina Hw. am Licht 118, 131, 132, 148,

Poduriden 4.

Poikilotherme wechselwarme Tiere 145.

Polia canescens Dup., Flugzeit 306, Futterpflanzen 307, Puppen- ruhe 306, Verpuppung 307, Zucht 302, 306.

Polia chi L., an Baumstämmen 183, 207, 210, Ei 46, Futter- pflanzen 46, Raupe 46.

Polia rafoeineta HG. 2: suda HG. 2:

Polistes diadema (Hym.), Bauten 180.

Polyarthron unipectinatum White (Col.), Lebensweise 222.

Polyetenes (Hem.) Parasiten der Fledermäuse 41.

Polygonia egea Cr. 295.

Porthesia similis Fuessl, am Licht 118.

Präparate zur Bestimmung des Flügelgeäders der Schmetter- linge 52. .

Präparation der Insekten, Anleitung dazu 192.

Prestwichia apuatica Lubb. 194.

Pristiphora betulae Retz. (Hym.) 132.

Problepsis cana Hampson 34: triacellata Bastelb. n. spec. 33.

Procrustes coriaceus Bon. (Col.) am Köder S6.

Prodryas persephone Sceudder im Oligocän 161.

Prothymnia viridaria Cl]. 60.

xanthomista Hb. 2.

Protoparce convolyuli L. im Oktober 210.

Psacasta allioni (Hem.), Aussehen 154.

Psamotis hyalinalis Hb. am Licht 117, 118.

Psecadia pusiella Roem. 59, 72, Futterpflanze 51, Verpuppung 67, Sehlüpfen 109, 117.

Pseudhemithea Bastelb. gen. nov. 281.

Pseudhemithea detrita Bastelb. n. sp. 281.

Pseudonotis humboldti Smith 114; metilia Frnhst. n. sp. 114; obiana Fruhst. n. sp. 114,

Pseudophia lunaris Schiff. und tirrhaea Cr., Reif der Puppe 122.

Pseudoterpna pruinata Hufn. 294.

Psiloptera mimosae Klug (Col.), Lebensweise 222.

Psodos alpinata Se. 117, Ei 140; alticolaria Mann, Ei 140; quadrifaria Sulz 183, Vorkommen 132; trepidaria Hb., Ei 140.

Psyche viciella Schiff. 51.

Psychidae, Variabilität 234, neue Formen 234.

Psychidea proxima Led 234.

Psychiden-Hybriden 3, 4.

Pteronus curtispinis Thoms. und hortensis Htg. (Hym.), Fütte- rungsversuche 124.

Pterophorina, ihre Klassifikation 35, 36.

Pterophorus osteodaetylus Z. am Licht 170.

Pterostoma palpina L. am Licht 109.

Ptilophora plumigera Esp. 14, 91, 210, spätes Vorkommen 210.

Ptychopoda limbata Bastelb. n. spec. 37; perverata Bastelb. n. sp. 37. ;

Puppe a Callophrys rubi L. 57; Comacla senex Hb. 50; Lycaena argiades Pall. 129, g. v. polysperchon Bergstr. 129, argus L. 138, argyrognomon Bergstr. 146, semiargus Rott. 287, 312; Parascotia fuliginaria L. 324; Psecadia pusiella Roem. 67; Stenoptilia pneumonanthes Schleich 229; Thecla pruni L. 54.

Puppenruhe bei Agrotis candelarum Hb. 107, eandelisequa Hb. 107, imbria L. 107, foreipula Hb. 107, latens Hb. 107, lueipeta F. 107, margaritacea Vill. 107, multangula Hb. 107, signifera F. 107; Chrysophanus aleiphron Rott. 66, hippotho@ L.65; Coenonympha pamphilus L. 26; tıphon Rott. 53; Comacla senex Hb. 50; Lycaena argiades Pall. 130, g. v. polysperchon Bergstr. 130; Paraseotia fuliginaria L. 324; Polia eanescens Dup. 306; Sele- nephera lunigera Esp. 19; Thecla pruni L. 54: Xan- thodes malvae Esp. 303; Zephyrus betulae L.58, querceus L. 58.

Pygaera pigra Hufn. 40, Futterpflanze 207.

Pyralis farinalis L. 67, am Lieht 117.

Pyrameis atalanta L., Temperatur-Produkte 247; ab, merrifieldi Stdfs. 247.

Pyrameis cardui L., Ei 133; Eiablage 117, junge Raupe 133, Wanderzüge 248.

Pyrausta alpinalis Schiff. am Lieht 109; cespitalis Schiff, am Lieht 132: tunebris Ström. ab. trigutta Esp. am Licht 109; purpuralis L. am Licht 182; sambucalis Schiff. 91; terrealis Tr. 46, 5l, am Licht 109, Verpuppung 46, 207.

Pyrrhia umbra Hufn., Futterpflanze 153, am Köder 132, am ‚Lieht 109.

Pyrrhoeoris apterus L. (Hem.) 13.

Raphidia (Neur.) laticeps Wallgr. und notata F. 234.

Raupe, deren Beschreibung: Agrotis margaritacea Vill. 106, ypsilon Hufn. 236; Coenonympha iphis Schi#. 12, pam- Philus L. 26, tiphon Rott. 53; Comacla senex Hb. 50; Lycaena argiades Pall. 114, 121, 129, g. v. polysperchon Bergstr. 141, 121, 129, aleon F. 239, semiargus Rott. 139, Polia chi L. 46; Thecla pruni L. 54; Zephyrus betulae L. 58. 1

Raupe, deren Futterpflanzen: Acronieta alni L. 46; Agrotis latens Hb. 260, margaritacea Vill. 106, ypsilon Hufn. 336; Aporia crataegi L. 46, 284; Arctia casta Esp. 52; Callimorpha dominula L. 52; Callophrys rubi L. 57; Callosanıia promethea Dru. 12; Calymnia pyralina View. 67, 91; Caradrina pulmonaris Esp. 5l; Catecala amatrix Hb. 275, 308; amica Hb. 308, angusi 308, antinympha Hb. 308, badia Grote a. Rob. 243, 308; cerogama Guenee 308, concors 308, eonceumbens WIk. 275, 308, crataegi Saunds. 308, elonympha Hb. 308, epione Dru. 308, fraxini L. 268, fulminea Se. 255, grynea Cr. 308, habilis Grote 275, 308, ilia Guende 275, 308, illecta WIk. 275, 308, innubens Guenee 275, 308, minuta Edw. 305, mu:ierceula Guende 308, neogama Smith a. Abb. 275, 308, nubilis 275, 308, paleogama Guenee 275, 308, parta Guenee 275, 308, piatrix Grote 275, 308, relieta WIk. 308, retecta Grote 275, 308, robinsonii Grote 275. 308, serena 308, subnata Grote 308, ultronia Hb. 308, unijuga WIk. 275, 308, vidua Sm. a. Abb. 275, 308, viduata Guenee 308: Cerura fureula Cl. 3; Crysophanus aleiphron Rott. 65, amphidamas Esp. 86, dorilis Hufn. 77, hippotho@ L. 65, phlaeas L. 66: Coenonympha arcania v. alt. satyrion Esp. 25, pamphilus L. 26, tiphon Rott. 53; Deilephila vespertilio Esp. 206; Dieranura erminea Esp. 139; Epi- blema luctuosana Dup. 46; Epinephele tithonus L. 12; Gortyna ochracea Hb. 46: Lycaena argiades Pall. 90, 130, g. v. polysperchon Bergstr. 86, 100, 130, argus L. 135,

XII

argyrognomon Bergstr. 146, icarus Rott. 153, orion Pall. 153, semiargus Rott. 179, 189, 266; Lymantria mo- nachaL. 269, 296: Nemorıa viridata L. 233; Orgyia gono- stigma F. 67; Parascotia fuliginaria L. 323; Plusia modesta Hb 51; Polia caneseens Dup. 307; ehi 1. 46; Psecadia pusiella Roem. 5l; Selenephera lunigera Esp. 15; Syntomis phegea L. 28; Taeniocampa opima Hb. 45; Theecla pruni L. 54; Triehiura erataegi L.67; Xanthodes malvae Esp. 302; Xylina ingrica HS. 5l, 117; Zephyrus quereus L. 58

Raupe, deren Gewohnheiten: Agrotis latens Hb. 260, marga- ritacea Vill. 106; Catocaia amatrix 808; Chrysophanus dorilis Hufn. 77, hippotho& L. 65, 73, phlaeas L. 66: Coenonympha tiphon Rott. 53; Luceria virens L. 61: Lyeaena argiades Pall. und g. v. polysperchon Bergstr. 90, 100, icarus Rott. 153; Polia chi L. 46; Selenephera lunigera Esp. 15; Xanthodes malvae Esp. 302; Zepbyrus quercus L. ö8.

Reaktionen auf Temperatur-Reize 145, 154, 197.

Regeneration 72, 215.

Rhagium sycophanta Schrank (Col), Fang 101.

Rhizogramma detersa Esp. 148, am Köder 149, am Licht 11S, 131.

Rhodophaea suavella Zk. am Licht 132.

Rhodostrophia vibicaria Cl. 132.

Rhyparia purpurata L., Futterpflanzen 59, am Lieht 131, Ur- sachen des Versehwindens 248.

Rivula sericealis Se am Licht 109, 183.

Rubus-Bewohner 206, 311.

Rusina umbratica Goeze 46, 5l, am Licht 109, 118.

Saison-Dimorphismus 230.

Salatura panda Gudt. balina Fruhst. n. subsp. 238.

Salebria betulae Germ. am Licht 131; obductella Z. am Licht 109, 183; semirubella Se. am Licht 148, 182.

Sammeln, Wert desselben 89, 101, 115, 130.

Saturnia pavonia L., Flugzeit der Männchen 219, Liebesleben 171.

Saturnia pyri Schiff., Liebesleben 171.

Satyrus-Gruppen 29,

Satyrus actaen monocolus Fruhst. n. subsp. 10, synonym mit pimpla Felder 29.

Satyrus anthe n. subsp. persephone Bingham 10.

Satyrus briseis L. 195, 295; briseis deminuta Frubhst. n. subsp. 195.

Satyrus eirce F. 295.

Satyrus heidenreichi shandura Marsh. 10.

Satyrus hermione L., Flugzeit 295.

Satyrus mniszechi baldiva Moore 10; mniszechi lehana Moore 10.

Satyrus parisatis Kollar 10.

Satyrus semele L. 9, 284, 295.

Satyrus semele forma jubaris nova Fruhst. 9; semele eadmus Fruhst. n. subsp. 9; s. diffusa Butl. 10; s. senthes Fruhst. n. subsp. 10; s. teres Fruhst. n. subsp. 10.

Satyrus telephassa Hb. 10. :

Schlüpfen, vorzeitiges, bei Arctia easta Esp. 212.

Schlupfwespen, Anlage der Sammlung 288, Bestimmungs- werke 289, 309, Fang 289, 309, Töten 289, 309, Präpa- ration 289, 309.

Schmarotzer der Fledermäuse 41, Lyda 93.

Schutzfärbung 193.

Schutzfarben-Theorie 193.

Schwänze der Papilio 13.

Schwanzkiemen 72.

Schwingkölbehen der Dipteren 6, 20.

Seioptera plumistrella Hb., Gewohnheiten des Falters 324.

Seioptera sehiffermilleri Stgr.. Gewohnheiten des Falters 324.

Sciopfera tenella Spr., Sack 324, Schüpfzeit 234.

Scoliopteryx libatrix L., lange Flugzeit 39, 132, am Köder öl, 67, 183.

Seoparia dubitalis Hb. am Licht 109, 131; zelleri Wocke am Licht 132.

Seopelosoma satellitia L. 46, 91, später Flug 6, am Köder 46.

Scopelosoma satellitia ab. brunnea Lampa 46.

Scoria lineata Sc. am Licht 91.

Seythris euspidella Schiff. 170.

Selbstverstümmelung 215.

Selektion (natürliche Zuchtwahl) 193, 257, 316.

Selenephera lunigera Esp., Eiablage 19, Gewohnheit der Raupe 18, Kopula 19, Puppenruhe 19, Suchen der Raupe 185, Ueberwinterung 19, Verpuppung 19, Vorkommen 20, Zucht 19.

Selenephera lunigera ab. lobulina Esp. 20.

Selenia lunaria Schiff. am Licht 109.

Semasia hypericana Hb. am Licht 118.

Semiothisa alternaria Hb. am Licht 109; Jlitura Cl. sm Lieht 109, 118; signaria Hb. am Licht 118.

Sesia annellata Z., Suchen der Raupe 286; cephiformis O. 33; flaviventris Stgr, Verbreitung 269; myopaeformis Bkh. 46, Zueht 46, 51; spuleri Fuchs n. sp. 33; tipuli- formis Cl. 33.

Sigalphus tenthredinum Htg. (Hym.), Schmarotzer bei Lyda (Hym.) 98.

bei der Blattwespengattaung

Silpha (Col.) atrata L., obscura L., quadripunctata L., reti- culata Fabr., rugosa L,, sinuata Fabr., thoraeica L. am Köder 70.

Simroths Pendulations-Theorie 41.

Sinneskegel 275.

Smerinthus kindermanni Ld. 177.

Smerinthus ocellata L., Entwicklungsgeschichte 161, 169, 178, Größenverhältnisse 169, charakteristisches Merkmal 169, Verbreitung 161, 169; Nachtruhe der Raupe 200, 207.

Smerinthus ocellata v argus Men., charakteristisches Merkmal 162, 169, Raupenzeichnung 200, Verbreitung 162, 169.

Smerinthus ocellata v. atlantieus Aust., charakteristische Merk- male 162, Verbreitung 162, 169.

Smerinthus ophthalmieus 170.

Smerinthus tatarinovii Brem. et Grey 177.

Smerinthus (Dilina) tiliae L. 177.

Spannstreifen 192.

Spathegastn taschenbergi (Hym.), Generationswechsel 232.

Species, ihr Kriterium 40.

Sphenoptera suleata Mars. (Col), Lebensweise 221.

Sphex albiseetus Lep. u. Serv. (Hym.) 257.

Sphingidenraupen: Zeiehnung 200.

Sphinx ligustri L. 56, am Licht 91, 109, 131; Raupen 184, 236.

Spilosoma lubrieipeda L., am Licht 109, 131; Raupe am Köder 183,

Spilosoma menthastri Esp. 67, 72; am Licht 91, 131.

Staphylinus (Col.) eaesareus Cederh. und maxillosus L. am Köder S6.

Stech-Apparat der Mücken 156.

Stegomyia fasciata F., Uebertragung von Krankheiten 163,

Stelis ornatula Nyl. (Hym.) 311.

Stenoptilia bipunctidaetyla Hw., Lebensweise 223, 229.

Stenoptilia coprodactyla Z., Futterpflanze 325.

Stenoptilia pneumonanthes Schleich, Entwicklung 217, 222, 229.

Stenoptilia zophodactyla Dup., Lebensweise 229.

Sterrhopteryx standfussi HS., am Licht 109.

Stilpnotia salieis L., am Licht 131.

Strebliden (Dipt.) der alten Welt 41, Mittel- und Südamerikas 41, eigentümliches Zusammenlegen der Flügel 41.

Strepsipteren, Deckflügel 5, Flügelgeäder 13.

Styx infernalis Stgr. 242.

Subspecies 322.

Süßwasser-Hymenopteren 194,

Summen der Dipteren 6, 20, 29.

Swammerdam’s Einteilung der Insekten 273,

Sylepta ruralis Sc., am Licht 182.

Symbrenthia hippoclus de Nicev. balinus Fruhst. n. subsp. 238.

Symbrentbia bypselus Godt. redesilla Fruhst. n subsp. 238.

Symmetrie, bilaterale 315.

Syntomis phegea L., Eiablage 28, Futterpflanzen 28, Ver- puppung 28, Vorkommen 148, 295, als Wetterpropheten 27. Zucht 28. 5 ,

Syrphiden (Dipt.), ihr Summen 6, 20.

Tachina larvarım L. (Dipt.), Schmarotzer bei Lyda (Hym.) 93.

Tachyris nero F. auf Balı 238.

Taeniocampa gothica L., am Köder 46, 51, 59.

Taeniocampa gracilis F., am Köder 5l, 59.

Taeniocampa ineerta Hufn, am Köder 46, 59; ab. fuscata Hw., am Köder 46.

Taeniocampa opima Hb., Futterpflanzen 45, Zucht 45.

Taeniocampa stabilis View., am Köder 46.

Tagebuch, entomologisches, 39, 46, 51, 59, 67, 71, 91, 107, 117, 131, 148, ı70, 182, 207, 209.

Tanaöeia palguna Moore balina Fruhst. n. subsp. 238; p. sty- giana Fruhst. 238.

Tanymecus Germ. (Col., Hautsekret 122.

Temenis pulchra Hew. 242; p. aequatorialis Oberth. 242; p- amazonica Fruhst. 242; p. dilutior Fruhst. pallidior Oberth. 242.

Temperatur-Experimente 145, 246.

Temperatur-Maximum 145.

Temperatur-Minimum 143.

Temperatur-Optimum 39, 47, 145, 198.

Temperatur-Umkehr 220. (

Tenebrio molitor L. (Col.), Regenerationsvermögen? 72.

Tentakeln 47.

Tephroclystia abbreviata ab. n. hirschkei Bastelb, 95.

Tephroclystia castigata Hb. am Licht 109.

Tephroelystia denotata Hb., am Licht 182,

Tephroelystia innotota ab. n. rotundata Bastelb. 98.

Tephroelystia lanceata Hb. 50, am Köder 51,

Tephroclystia pusillata F., am Köder 59.

Thais F., ausstülpbare Drüse 301.

Thais polyxena cassandra Boisd. 58; p. creusa Meigen 58; p. latiaris Stichel 58; p. reverdini Fruhst. n. subsp. 58.

Thalera lactearia L, 91.

Thamnonoma brunneata Thnbg., am Licht 132.

Thamnonoma wauaria L., am Licht 118, 131.

Thanaos tages L. 60, 294.

Thaumetopoea pinivora Tr., Ueberwinterung 269.

Thaumetopoea pityocampa Schiff., Ueberwinterung 269,

Absterben der

m

Thaumetopoea processionea L., Eiablage 324, Flugzeit 324, heliophile Raupe 324, Ueberwinterung der Puppe 269, 324, Verpuppung 324.

Thecla acaciae F., bei Agram 66.

Theela ilieis Esp. 54, 294, bei Agram 66.

Thecla pruni L., Aberration 54, Ei 54. Eiablage 54, Futter- pflanze 54, Gewohnheiten des Falters 54, Puppe 54, Puppenruhe 54, Raupe 54, Aufsuchen der Raupe 54, Verbreitung 54, 66, Verpuppung 54.

Thecla pruni ab. badio-fasciata Gillmer n. ab. 54; ab. fuiva Gillmer n. ab. 54.

Theela spini Schiff. 294, bei Agram 66.

Thecla w.-album Knoch 91, 108, 117, bei Agram 66.

Thrips cerealium (Orth.), massenhaftes Auftreten 191.

Thyatira batis L., II. Generation 207, am Köder 72, 132, 207, am Licht 109. .

Timarcha coriaria Laich (Col.) 106.

Tortrix steineriana Hb., Vorkommen 183.

Tortrix viridana L., Flugort 117, am Licht 118.

Toxocampa viciae Hb., am Licht 109, 132.

Trachea atriplieis L., am Köder 149, am Licht 109.

Trichiosoma lucorum L. (Hym.), Ueberliegen der Puppe 132.

Tricbiura erataegi L., Futterpflanzen 67.

Triphosa dubitata L,, am Licht 11S,

Trochilium apiformis Cl. 51, 211.

Troctes divinatorius MI. (Neur.) 47.

Troides eritonides @ forma einna nova Fruhst. 50.

Troides goliath supremus Röber 50.

Troides helena L. mannus Fruhst. n. subsp. 238.

Troides paradiseus 9 forma caliginosa nova Fruhst. 50.

Troides rhadamantus bazilanieus Fruhst. n. subsp. 39.

Trox scaber L. (Col.), am Köder 86.

Tryphon (Hym.) involator Gr., laevis Rbg. und pyriformis Rbg. Schmarotzer bei Lyda (Hym.) 93.

Trypoxylon Latr. (Hym.), Niststätten 206, 311.

Ueberliegen der Puppen 132.

Ueberwinterung bei Agrotis latens Hb. 260, margaritacea Vill. 106; Argynnis paphia L. 108; Callophrys rubi L. 57; Carabus arvensis (Col.) 46; Chrysophanus aleiphron Rott. 65, hippotho& L. 65, 73, phlaeas L. 66, vir- gaureae L. 73, 246; Coenouympha pamphilus L. 26; Epinepbele tithonus L. 12; Lithosia sororeula Hufn. 60; Lycaena alcon F. 239, argiades g.v. polysperchon Brgstr. 100, argus L. 138, areyrognomon Brestr. 139, icarus Rott. 153, semiargus Rott. 265, 266, 286; Maecro- thylacia rubi L, 45; Parnassius mnemosyne L. 60; Selenephera lunigera Esp. 19; Stenoptilia pneumonanthes Schleich 217, 223; Thaumetopoea pinivora Tr. 269, pityo- campa Schiff. 269, processionea L. 269, 324; Xanthodes malvae Esp. 302; Zephyrus quercus L. 58.

Ueberwinterung der Schmetterlingspuppen, neues Verfahren 55.

Unterart 322.

Valeria jaspidea Vill. und oleagina F., Kokon 55.

Vanessa antiopa L., Temperaturprodukte 247; ab. roederi Stdfs. 247.

Vanessa io japonella Stichel, neuer Name für io geisha Stichel 222.

Vanessa urticae L. 45, Stammform 181.

Vanessa urticae v. ichnusa Bon. 181, v. polaris Stgr. 5, 182, v. tureica Stgr. 182.

Variation bei Coenonympha arcania L. 25, 234, iphis Schiff. 12, pamphilus L. 26, tiphon Rott. 53, Epinephele titho- nus L. 12; Lycaena argyrognomon Brgstr. 146, icarus Rott. 1, 10, 79, 154, 162, 178.

Venilia maecularia L. 67.

Verbreitung von Callophrys rubi L. 57; Chrysophanus aleiphron Rott. 65, amphidamas Esp. 86, dispar.v. rutilus Wernb. 66, dorilis Hufn. 70, 77, hippotho& L. 65, phlaeas L. 66; Coenonympha arcania L. 25, iphis Schiff. 12, pamphilus L. 26, tiphon Rott. 53; Epinephele tithonus L. 12; Lycaena argiades Pall, und g. v. polysperchon Brestr. 86, argus L. 138, argyrognomon Brestr. 88, 139, eyllarus Rott, 513, orion Pallas 153, semiargus Rott. 178; Sele- nephera lunigera Esp. 20; Sesia flaviventris Stgr. 269; Theela acaciae F. 66, ilieis Esp. 66, pruni L, 54, 66, spini Schiff. 66, w-album Knoch 66; Zephyrus betulae L. 58, quercus L. 58.

Verkehrte Lage des Schmetterlings in der Puppe 285.

Verpuppung bei Agrotis latens Hb. 260, margaritacea Vill. 107; Baris granulipennis Trn. (Col.) 222; Callophrys rubi L. 57; Carpocapsa pomonella L, 46; Chrysophanus aleiphron Rott. 65, dorilis Hufn. 77, hippotho& L. 65, phlaeas L. 66; Coenonympha tiphon Rott. 53; Comaela senex Hb, 50; Deilephila vespertilio Esp. 206; Dieranura er- minea Esp. 139; Lycaena argiades Pall. 129, g. v. poly- sperchon Brastr. 100, 129, semiargus Rott. 237; Nemoria viridata L. 234; Parascotia fuliginaria L. 323; Plagiographus st.-pierrei Chol, (Col.) 222; Polia eanescens Dup. 307; Psecadia pusiella Roem. 67; Selenephera lunigera Esp. 19; Stenoptilia pneumonanthes Schleich 217, 223; Syntomis phegea L. 28; Thaumatopoea pro- cessionea L, 324; Thecla pruni L. 54; Xanthodes

6}

malvae Esp. 503; Zephyrus betulae L. 58, quercus L. 58.

Verzeichnis der benannten Hybriden 35.

Vitalismus 293.

Vögel und Insekten 205.

Vorkommen von Colias edusa F. 256, Deilephila vespertilio Esp. bei Wien 206, Philosamia eynthia Dru. bei Wien 194, 212.

Vorläufer des Schmetterlingsgeschlechts 156.

Vorzeitiges Schlüpfen bei Aglia tau L. 249, bei Arctia casta Esp. 212.

Waffen der Insekten 30].

Waigeum miraculum Druce 113, m. forma nova depicta Fruhst. 113, m. forma nova roscia Fruhst. 113, m. forma simplex Smith 113, m. forma thauma Stgr. 113.

Waigeum ribbei Röber 113, r. makriki Ribbe 113, r. subeoeruleum Grose Smith 113.

Wanderzug der Kohlweibßlinge 124.

Wanzen, Schmarotzer bei Fledermäusen 41.

Weechselwarme Tiere 145.

Wert des Sammelns biologischer Objekte 89, 101, 115, 130.

Wertschätzung der Vögel 205.

Wüstenkäfer 221.

Xanthia fulvago L., am Köder 183.

Xanthodes malvae Esp., Futterpflanze 302, Puppenruhe. 302, Ueberwinterung 302, Verpuppung 302, Zucht 302. -

Xylina fureifera Hufn. 210, am Köder nach der Ueberwinterung 5l, im November geködert 6,

Xylina ingrica HS. 51, lange Flugzeit 39, Futterpflanze 51, 117, am Köder 46, 67, 72.

Xylina ornitopus Rott., am Köder 46.

Xylina socia Rott., am Köder 46, 207.

Xylocopa violacea L. (Hym.), Fang 180.

Xylomiges eonspieillaris L. ab. melaleuca View. am Köder 51.

Ypsolophus limosellus Schläg. 148.

Zahl der Insektenflügel 5.

Zanelognatha tarsicrinalis Knoch am Köder 117, am Licht 109, 118.

Zanclognatha tarsipennalis Tr. am Köder 170.

Zanclorhaeos Bastelb. gen. nov. 267.

Zanclorhacos nigrivenata Bastelb. n. sp. 267.

Zange der Ohrwürmer 13.

Zephyrus betulae L., Aberration 58. Aufenthalt 58, Ei 58, Eiablage 58, Flugzeit 58, 66, Gewohnheiten des Falters 58, Puppenruhe 58, Raupe 58, Verpuppung 58.

Zephyrus betulae L. ab. spinosae Gerh. 58, 88.

Zephyrus quereus L., Ei 58, Eiablage 58, Flugzeit 53, 66, Ge- wohnheiten des Falters 57, Gewohnheiten und Kanni- balismus der Raupe 58, Puppendauer 58, Ueberwinte- rung 58, Verbreitung 58, 66, Verpuppung 58.

Zephyrus quereus ab. bellus Gerh. 88.

Zerynthia siehe Thais-

Zimmerzucht, ihre. Vorteile 139.

Zirpende Puppen: Callophrys rubi L. 57.

Zonabris menthae Klug (Col.), Lebensweise 222.

Zucht von Agrotis latens Hb. 260, margaritacea Vill. 107, ypsilon Hufn. 236; Arctia casta Esp. 52; Argynnis paphia L. 107; Callosamia promethea Dru. 12; Catocala cara (ruenee 275, 288, fraxini L. 268. 296, fulminea Seop. 255, parta Guenee 288, relieta Walker 288, ultronia Hb. 288, vidua Smith. a. Abbot 288; Cerura fureula Cl. 3; Chrysophanus hippotho& L. 73, virgaureae L. 73; Comacla senex Hb. 50; Deilephila vespertilio Esp. 206; Dieranura erminea Esp. 139; Lemonia dumi L. 51, 109, 210; Lycaena argiades Pall. 90, g. v. polysperchon Bergstr. 100, argus L. 138, argyrognomon Brgstr. 146; Lymantria monacha L. 269; Tolia canescens Dup. 302, 306; Psychiden-Hybriden 4; Selenephera lunigera Esp. 19; Sesia myopaeformis Bkh. 46; Syntomis phegea L. 38; Taeniocampa opima Hb 45; Xanthodes malyae Esp. 302, 303.

Zuchtbehälter, deren Selbstanfertigung 20.

Zuchtglas 37.

Zuchtwahl (Selektion) 193, 257.

Zuckergast 47, 72.

Züchtung in „reinen Linien“ 316.

Zustandsformen 322.

Zweck des Sammelns 89, 101, 115, 150.

Zwitter 286.

Zwitter von Agrotis corticea Hb. 313; Epinephele tithonus L. 123, J31; Euchlo& cardamines L. 131; Lycaena argus L. 71; Pieris daplidice L. 131.

Zygaena achilleae Esp. ab. confluens Dziurz. 294.

Zygaena carniolica Sc. 148, 164, 294.

Zygaena ephialtes L. ab. medusa Pall. 148; v. peucedani Esp. ® in Kopula mit filipendulae L. g', transalpina Esp. &, meliloti Esp, g' und transalpina v. astragali Bkh. g 164, 185.

Zygaena exulans Hochenw. aberr. 296.

Zygaena filipendulae L, 148, lonicerae Schev. 59.

Zygaena purpuralis Brünnich, eine interessante Form 295, Vor- kommen 149. 294.

Zygaena scabiosae Scheven 91.

u u ru

ung

Zygaenen: Kopula zwischen verschiedenen Zygaena-Arten 164. Zygaenen-Hybriden, kommen solche vor? 164.

All. Neubeschriebene Gattungen, Arten, Unterarten und Formen,

Acidalia planidisca Bastelberger 34, subtaeniata Bastelberger 34.

Appias leptis Feld. balinus Fruhst. 238.

Archonias eritias Feld. rubrosparsa Stichel 24i.

Archonias bellona phaloreia Fruhst. 2 237.

Argynnis adippe L. auresiana Fruhst. 69.

Argynnis amathusia Esp. bosna Fruhst. 214, amathusia dinara Fruhst. 214, amathusia halesa Fruhst. 214. amathusia pralognana Fruhst. 214, amathusia serena Fruhst. 214.

Argynnis hecate aigina Fruhst. 194, 215, hecate triburniana Frubst. 214.

Argynnis pandora pasargades Fruhst. 69, pandora seitzi Fruhst. 69

Argynnis paphia L. thalassata Fruhst. 69.

Boarmia luridata ab. cornelseni Hoffm. 38. SO.

Bombus (Hym.) hortorum arborensis Krauße 139. pratorum aureus Krauße 133, soroönsis quattricolor Krauße 133, terrestris dettoi Krauße 132.

‚Catocala eleeta ab. suffusa Gillmer 282.

Chaerocampa elpenor forma daubi Niepelt 209.

Chrysophanus dorilis ab. antieo-radiata Gillmer 78, ab. fas- eiata-extensa Gillmer 78. ab. postico-radiata Gillmer 7S, ab. toto-radiata Gillmer 78.

Chrysophanus virgaureae athanagild Fruhst. 194, virgaureae juvara Fruhst. 195, virgaureae juvara galsnintha Fruhst. 195, virgaureae zermattensis fredesunda Fruhst. 194, virgaureae zermattensis onka Fruhst. 195, virgaureae zermattensis seriata Fruhst. 194.

Cieindela (Col ) litoralis var. dalmatina Schulz 317. var. istriensis Sehulz 317, var. oranensis Schulz 317, var. tripolitana Schulz 317

Cieindela (Col.) paludosa var. ‘barcelonensis Schulz 317, var. toledana Schulz 317.

Cieindela (Col.) silvatiea var. obotritica Schulz 316.

Cieindela (Col.) silvicola var. tatrica Schulz 316.

Coenonympha hero neoperseis Fruhst. 10.

Coenonympha pamphilus orantia Fruhst. 10.

Coenonympha tiphon fermana Fruhst. 10.

Conolophia maeulata Bastelberger 98, maeulata rubrifusa Bastel- berger 282

Cyaniris argiolus ab. aquilina Grund 88.

Delias belisama balina Fruhst. 238,

Derambila larula Bastelberger 281, marginepunctata Bastel- berger 281.

Diacrisia sanio ab immarginata Niepelt 181.

Dialephtis bieurvata Bastelberger 267.

Dieranura vinula v (ab.) fenniea Schultz 237.

Dyscia strigosissima Bastelberger 232.

Emmiltis (Acidalia) planidisca Bastelberger 34, subtaeniata Bastelberger 34.

er anormata Bastelberger 105, antipodaria Bastelberger

Eucosmia certata ab. griseata Bastelberger 98.

Euploea crameri singaradha Fruhst 238.

Gonodela cretiguttata Bastelberger 282.

Heterusia repagulata Bastelberger 105.

Hyalina lueasi Trautmann 316.

Limenitis populi enapius Fruhst. 50, populi eumenius Fruhst. 50, populi goliath Fruhst. 50.

Lycaena argus ab. eaeeca Grund 71, ab. obseura Grund 71.

Lycaena arion ab. punetifera Grund 88.

Lycaena icarus ab. @ amethystina Gillmer 10, ab. excessa Gillmer 178, ab. 2 fusca Gillmer 11, ab. nana Grund 79.

Mlacrolenes(Col.) bimaeulata var. gallica Schulz 323, var. immaeu- lata Schulz 323, var. quadrimaculata Schulz 323, var. trimaeulata Schulz 323.

Macroploea corus defiguratus Fruhst. 238.

Melitaea phoebe koios Fruhst. 194, phoebe lokris Fruhst 194.

"Miletus apelles praeclarus Fruhst. 91; doleschalli medocus Frubst 85; eucletus eratosthenes Fruhst. 85, eucletus menandrus Fruhst. 85, eucletus sabirius Fruhst. 91; polyeletus hylaithus Fruhst. 92, polyeletus kaystrus Fruhst. 92, polycletus linos Fruhst. 92, polycletus menyllus Fruhst 91, polyeletus oineus Fruhst. 91; pretiosus aristobul Fruhst. 85; pythias werneri Fruhst. 99; siren eugippius Fruhst. 85.

‚Neptis hylas saleyra Fruhst. 238.

Nipteria sibylla ab. gorgoniata Batelberger 106, ab. intermedia Bastelberger 106.

‚Papilio agestor matsumurae Fruhst. 282; hector heroicus Fruhst. 49; liris damarieus Fruhst. 49, liris gaetus Fruhst. 49, liris navigator Fruhst. 49, liris verifieatus Fruhst. 50, liris gaetus pseudoliris Fruhst. 49; macareus albinovanus Fruhst. 238; polydorus albosignatus Fruhst. 49, polydörus naissus Fruhst. 49; polyphontes aipytos Fruhst. 49, polyphontes lingonus Fruhst. 49, polyphontes sejanus Fruhst. 49.

XV

Pararge aegeria camoena Fruhst. 9, aegeria egestas Fruhst. 9; hiera praegrandis Fruhst. 9.

Parnassius mnemosyne dinianus Fruhst. 17, mnemosyne hart- manni umbratilis Fruhst. 17, mnemosyne mesoleueus Fruhst. 18, mnemosyne silesiacus Fruhst. 17, mnemo- syne turatii Fruhst. 17, mnemosyne vernetanus Fruhst. 17.

Perixera praetermissa Bastelberger 38.

Problepsis triocellata Bastelberger 33.

Pseudhemithea Bastelberger 281.

Pseudhemithea detrita Bastelberger 281.

Tseudonotis metilia Fruhst. 114; obiana Fruhst. 114.

Ptychopoda limbata Bastelberger 37; perverata Bastelberger 37.

Salatura panda balina Fruhst. 238.

Satyrus briseis deminuta Fruhst. 195; semele eadmus Fruhst. 9, semele semele jubaris Fruhst. 9, semele senthes Fruhst. 10, semele teres Fruhst. 10.

Sesia spuleri Fuchs 33.

Symbrenthia hippoclus balinus Fruhst. 238; hypselis redesilla Fruhst. 238.

Tanaöeia palguna balina Fruhst. 258.

Tephrocelystia abbreviata ab. hirschkei Bastelberger 98; inno- tata ab. rotundata Bastelberger 98.

Thais polyxena reverdini Fruhst. 58.

Theela pruni ab. badio-faseiata Gillmer 54, ab. fulva Gillmer 54.

Troides eritonides ® forma einna Fruhst. 50; helena mannus Fruhst. 238; paradiseus @ forma caliginosa Fruhst. 50; rhadamantus bazılanieus Fruhst. 39.

Waigeum miraculum forma depieta Fruhst. 113, forma roseia Fruhst. 113.

Zanclorhacos Bastelberger 267.

Zanelorhaeos nigrivenata Bastelberger 267.

IV. Bücherbesprechungen.

Calwer, Käferbuch, 6. Auflage 258 Fabre, Bilder aus der Insektenwelt 257 Lampert. Großschmetterlinge und Raupen Mittel-

Europas: 6, 237° Niekerl, Die Motten Böhmens (Tineen) 246 Niepelt, Der Insekten-Präparator 192 Tümpel, Die Geradflügler Mitteleuropas 191

Tutt, A. Natural History of the British Alueitides 28, 33

V. Vereins-Nachrichten.

Börsenbericht des Entomologischen Vereins „Apollo“

zu Frankfurt (Main) 216 Auszug aus dem Sitzungsprotokoll des Berliner Ento- mologen-Bundes vom 26. Januar 1909 296 Entomologischer Verein Fürth 326 VI. Abbildungen. Tabelle: Aenderung der Entwickelungsgeschwindig- keit mit der Temperatur 155

Das Ei von Acosmetia ealiginosa Hb. 3 Figuren 206, Honigdrüse der Raupe von Lycaena alcon F. Merkwürdige Fühlerbildung bei einem Athous niger L.

vll. Berichtigungen.

Seite 4 Spalte 2 Zeile 28 von oben lies Ragonot statt Ragonat.

Seite 5 Spalte 2 Zeile 13 von unten lies melanotischen statt melatonischen.

Seite Il Spalte I Zeile 21 von oben lies Hinzureehnung statt hinzurechnung. 3

Seite 13 Spalte 2 Zeile 8 von unten lies Suctoria statt Suc- tiora.

Seite 25 Spalte I Zeile 6 von unten lies Anhaltspunkt statt Aufenthaltspunkt.

Seite 27 Spalte 2 Zeile 22 und 23 von oben lies häufigsten statt bäutigsten.

Seite 28 Spalte 2 Zeile 23 von oben lies behandelt statt beantwortet.

Seite 34 Spalte 1 Zeile 2 von unten lies gelbliehbraun statt gleichbraun.

Seite 36 Spalte 1 Zeile 14 von unten lies Er statt Es.

Seite 50 Spalte 1 Zeile 3 von oben lies verificatus statt

velificatus.

Seite 60 Spalte 2 Zeile 27 von unten lies Puppen statt Raupen.

Seite 72 Spalte 2 Zeile 31 von oben lies regenerieren statt regenerien.

Seite 72 Spalte 2 Zeile 31 von oben lies können statt könnnen.

Seite 78 Spalte 1 Zeile 30 von oben lies antico-, postico- statt antico-postieo-.

Seite 9) Spalte 2 Zeile 31 von unten lies schlüpften statt schlüften.

Seite 91 Spaite 1 Zeile 23 von oben lies zu nimmt stat£ zunimmt.

Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite

Seite

91 Spalte 1 Zeile 28 von oben lies Anflug statt Antluge. 91 Spalte 1 Zeile 30 von unten lies sah statt faec.

91 Spalte 1 Zeile 29 von unten lies die statt did.

91 Spalte 1 Zeile 25 von unten lies Ich statt Inh.

91 Spalte 2 Zeile 15 und 16 von oben lies Thalera statt Thamnonoma.

92 Spalte 2 Zeile 36 von unten lies zusammenge- sponnenen statt zusammengesponnen.

92 Spalte 2 füge unten folgende Zeile an:

eine einfache Zusammenziehung des Blattes ent-

97 Spalte 2 Zeile 19 von unten lies principalis statt prineipialis.

106 Spalte 2 streiche Zeile 23 von unten.

108 Spalte 2 Zeile 8 von oben lies haben statt saben. 116 Spalte 2 Zeile 27 von oben lies Vergrößerungen statt Vorgrößerungen.

122 Spalte 1 Zeile 13°von oben lies Hinterleibe statt Hintenleibe. ! 123 Spalte 1 Bildung. 123 Spalte 1 123 Spalte 1

Zeile 25 von oben lies Bedeutung statt

Zeile 10 von unten streiche zur. Zeile 9 von unten streiche zum.

124 Spalte 2 Zeile 17 von unten lies eo ipso statt eo ipsio. 124 Spalte 2 Zeile 8 von unten lies sämtlich statt sämlich.

XVl

| Seite

Seite Seite

Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite Seite

Seite

139 Spalte 2 Zeile 13 von unten lies orn& de statt ornede.

147 Spalte 1 Zeile 26 von unten lies die statt gie.

162 Spalte 1 Zeile 7 von oben lies yariierendem statt varriierenden.

162 Spalte 1 Zeile 23 von oben iies variieren statt viriieren.

170 Spalte 1 Zeile 1 von oben lies Entomologen statt Etomologen.

178 Spalte 2 Zeile 7 von obea lies öden statt öder. 180 Spalte 2 Zeile 14 von oben lies Sirex statt Sinex. 150 Spalte 2 Zeile 17 von oben lies Larra statt Larva. 215 Spalte 1 Zeile 5 von oben lies aigina statt agina. 215 Spalte 1 Zeile Il von unten lies Arachneiden statt Archneiden.

220 Spalte 2 Zeile 7 von oben lies Blattkäfer statt Bockkäfer.

229 Spalte 1 Zeile 15 von unten lies Puppe statt Raupe. 256 Spalte 2 Zeile 7 von oben lies das statt daß.

322 Spalte 1 Zeile 21 von unten lies kleiner statt fleiner. ? 322 Spalte 1 Zeile 3 von unten lies Libelluliden statt Libelluiden.

323 Spalte 1 Zeile 5 von unten lies Apex statt Apax.

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\3,8Ub. Guben, den 4. April 1908. No. I. 2. Jahrgang.

‚nTERNATIONALFE | FT

Entomologen- Bundes.

Organ des Internationalen

Herausgegeben unter Mitarbeit bedeutender Entomologen.

Die „Internationale Entomologische Zeitschrift“ erscheint jeden Sonnabend.

Abonnements nehmen alle Postanstalten und Buchhandlungen zum Preise von 1,50 M. vierteljährlich an, ebenso der Verlag in Guben k bei direkter portofreier Kreuzband-Zusendung. Insertionspreis für die 3 gespaltene Petitzeile oder deren Raum 20 Pf. Abonnenten haben für ihre entomologischen Anzeigen vierteljährlich 25 Zeilen frei.

Schluss der Inseraten-Annahme jeden Mittwoch früh 7 Uhr.

Inhalt: Das ganze blaue 2 von Lycaena icarus Rott. mit roten Randflecken ab. Q amethystina m. Etwas über die Vermehrung von Faltern, im besonderen über die Zucht von Cerura furcula. Psychiden-Hybriden und deren Aufzucht. Fumea subflavella Mill. Einige Bemerkungen über die Insektenflügel. Weiteres zur Melanismus-Frage. Bemerkungen zu Otto Meißners „Dipterologischen Bemerkungen“ über das Summen der Dipteren. Kleine Mitteilungen. Bücherbesprechungen.

Das ganz blaue 2 von Lycaena iearus Rott. IX.) hat das Blau eine stark rötliche Beimischung, hingegen fehlt den QQ die blaue Bestäubung mehr

mit roten Randflecken ah. > amethystina m. | und weniger oder ganz, dafür sind aber ihre rot- Von M. Gillmer, Cöthen (Anhalt). gelben Randmonde viel größer, deutlicher und schär- = } $ fer (forma aestiva). (Vgl. Entomolog. Aalschr: Stuttgart XXI. 1907, p. 193 und Dies vorausgeschickt wenden wir uns zu den p- 199. Briefkasten). = blau gefärbten 99. Die 1775 von Rottemburg 1. c. gemachte Be-

Der Farbenunterschied ist bei beiden Geschlech-

tern recht erheblich: der 5 oben blau, unten hell- merkung, daß einzelne QQ auf der Vorderflügel- grau das © oben dunkelbraun mit rotgelben Rand- Oberseite mehr oder weniger blau übergossen seien, flecken, unten braungrau. Es muß letzteres hier wurde genau 100 Jahre später (1875) von dem ver- besonders hervorgehoben werden, weil einige eng- storbenen Pfarrer A. Fuchs aufgenommen; er lische Autoren auch das typische © als „blau mit zweigte aus den blauen OQ 1377 die aberr. @ eae- orangelarbenen Flecken‘ gekennzeichnet haben. ruleaab. Im Rheingau findet sich dieselbe in beiden Dies ist unzutrefiend, denn v. Rottemburg sagt Generationen nicht selten vor. Auf den Vorderflügeln ausdrücklich (Naturf. VI. 1775. p. 21.), daß das O erstreckt sich die tieiblaue Färbung bis in die Nähe von icarus auf der Oberseite dunkelbraun sei und am der rotgelben Randflecke (also nicht ganz bis zu Rande eine Einfassung von orangegelben Flecken ihnen), wobei der schwarze Mittelfleck deutlich her-

habe, welche bei einigen durch alle vier Flügel gehen, vortritt. Der Vorderrand bleibt schwarz; die Mittel- bei anderen aber bloß an den Hinterflügeln und bei rippe und ihre Aeste sind fein schwarz (bei den Yo einzelnen fast gar nicht sichtbar seien. Nur wenige der Frühjahrsbrut verlaufen die Rippen im Saum- hätten an der Basis der Vorderflügel einen großen felde oben ebenfalls schwarz bis in die Fransen hin- bläulichen Fleck, der sich mehr oder weniger über ein). Auf den Hinterflügeln ist der Vorderrand bis

den ganzen Flügel ausbreite. Das typische Q muß zum Vorderwinkel breit schwarz, im übrigen reicht also als „alis supra nigrofuscis, fascia die blaue Färbung bis an die rotgelben Saummonde marginali fulva‘ bezeichnet werden. heran. Die letzteren sind wurzelwärts durch

Die beiden Generationen (die dritte partielle | schwache Möndchen, saumwärts durch dicke Brut gleicht der zweiten), welche im Laufe eines schwarze Flecke begrenzt. Die Rippen sind vor Jahres fliegen, bieten dem aufmerksamen Beobachter dem Saume schwarz.

außerdem noch einige auffallende Unterschiede dar. Uebergänge hierzu sind vielfältig. Die meisten Im allgemeinen sind die yo der Frühjahrsbrut (Mitte OD zeigen eine Neigung ins Blaue abzuändern; am V bis Mitte VI) größer und von reiner blauer Grund- gewöhnlichsten ist ein blauer Anflug an der Wurzel

farbe; die DO zeigen auf den Vorderflügel-Oberseiten | der Vorder- und Hinterflügel. Oft sind die letzteren viel blaue Bestäubung und nur schwache rotgelbe | nur vor dem Saume blau. Diese Färbung wird von Randmonde (forma vernalis). Bei den J der den schwarzen Rippen durchbrochen und reicht bis Sommer- und Spätsommerbrut (Ende VII und VIII; an die rotgelben Saummonde heran.

U

Maaßen hat diese Veröffentlichung des Pfar- rers Fuchs übersehen und drei Jahre später (1880) dieselbe blaue Abänderung des © unter dem Na- men glauca publiziert. Aus seiner Beschreibung geht dies ohne Zwang hervor. Er sagt, daß die blauen OO bei Kissingen und Aachen oft an feuch- ten Stellen der Wege zusammen mit Lycaena bellar- gus Rott. anzutreffen und leicht mit deren blauen weiblichen Aberration ceronzs Esp. zu verwechseln seien. n

Zur ab. caerulea Fuchs gehört auch das von Esper auf Tab. 79, Fig. 2 abgebildete, aus der Gerningschen Sammlung stammende icarus ©, SO- wie ferner das von Hormuzaki in seinen Schmett. der Bukowina (Verh. zool.-bot. Ges. Wien, Bd. 47. 1897 p. 134) beschriebene und zu glauca gezogene © aus Krasna.

In einzelnen Fällen dehnt sich das Blau auf

der Oberseite bei den OO noch weiter aus als bei der ab. caerulea Fuchs, so daß die OO den Jc ganz ähnlich sehen; hierbei werden die orangefar- benen Randmonde ganz unterdrückt, und wir haben dann die ab. clara Tutt. Solche OO führt Schilde in den Ent. Nachr. X. (1884) und XI (1885) aus Lapp- land an, wenn er sagt: „Bei den OO von Zycaena Zcarus Rott. ist das Blau der Oberseite ebenfalls sehr reichlich und intensiv vorhanden. Einige icarus OO ohne rote Randflecke zeigen mehr Blau als wie Lycaena argus L. (= aegon Schiff.) 5 und sind oben kaum von ZLycaena argyrognomon Bergstr. yo zu unterscheiden. Selbst der Vorderrand der Vorder- flügel ist blau, in Weiß ziehend, der dunkle Mittel- fleck kaum wahrnehmbar.‘

Um diese ausgezeichnete Form scheint es sich auch bei dem von Staudinger in der Iris X (1897) auf- geführten zcarus © zu handeln: „Ein ganz reines, 28 mm großes © ist schön himmelblau, fast ohne violetten Anflug.“

In die gleiche Entwickelungs-Richtung gehören die ganz blauen OO von der in Kaschgar fliegenden icarusForm (= kashgharensis Moore), welche unter der Bezeichnung ab. yarkandensis Moore (1878) gehen. Es ist daher ab. yarkandensis der Name für die ganz blauen asiatischen (Pamirgebiet, Da- hurien), ab. c/ara derjenige für die ganz blauen europäischen icarus OQ.

(Fortsetzung tolgt.)

Etwas über die Vermehrung von Faltern, im besonderen über die Zucht von Gerura furcnia.

Von Scheele, Naumbure.

Wenn ich mir auch bewußt bin, in dem Fol- genden den Mitgliedern unseres Bundes nicht gerade Neues zu bringen, so hege ich doch die Hoffnung, dem einen oder anderen von uns eine kleine An- regung für seine Beschäftigung mit unseren Lieb- lingen, den herrlichen Faltern zu geben. Mein Zweck wäre damit ganz und voll erfüllt.

Bei Beginn meiner Tätigkeit als Sammler ging ich lediglich darauf aus, die angelegte Schmetterlings- sammlung zu vergrößern und zwar, abgesehen vom Kauf und Tausch, durch den Fang von Faltern und durch Aufzucht der im Freien erbeuteten Raupen. Dann aber regte sich allmählich der Wunsch, tiefer einzudringen in die Kenntnis vom Leben dieser Tierchen und zwar aller Stände derselben vom Ei zur Raupe, zur Puppe und zum vollkommenen In- sekt. Ich suchte deshalb zunächst in den Besitz von Eiern zu gelangen, schloß einen Teil der gefan- genen Weibchen von der Einreihung in die Samm-

lung aus und veranlaßte dieseiben zur=Eiablage in der Gelangenschait. Diese Versuche waren zuerst bei den Eulen, dann .auch bei Spannern, Spinnern und Schwärmern mit schönen Erfolgen gekrönt. Tagfalter haben sich allen meinen Versuchen bisher entzogen. Ich habe von letzteren noch keine Eier in der Gefangenschaft erhalten und bin in ihren Besitz nur dadurch gelangt, daß ich dem Fluge Eier ab- legender OO im Freien folgte und an den Stellen nachforschte, an welchen solche OD längere oder kürzere Zeit ruhten.

Manche Falter-QO schenkten mir Hunderte von Eiern. So legte ein Bisfon strataria O in einer Nacht zirka 1000 Eier. Damit wurden mir in der weiteren Aufzucht fast ebensoviele schöne Raupen und Falter, deren Lebensweise, soweit dies in der Gefangen- schaft möglich ist, ich beobachten konnte.

Der weitere Schritt zur Vermehrung war nun gar nicht schwer. Ich versuchte die gezogenen Fal- ter zur Copula zu führen und war höchst erfreut, als dies bei einer großen Anzahl von Arten gelang. Tausende von befruchteten Eiern kamen auf diese Weise in meinen Besitz.

Hatte diese Art der Beschäftigung den von mir anfänglich allein beabsichtigten Zweck, mit dem Le- ben der Tierchen nach Wunsch näher bekannt zu werden, so trat noch ein anderer, für die Vergröße- rung der Sammlung wertvoller Vorteil hinzu. Die Vermehrung der Art brachte Tauschobjekte in großer Zahl. Vor einigen Jahren kaufte ich 100 Stück Eier von Polia suda. Daraus erzog ich 60 Stück prächtiger Falter. 6 Pärchen ließ ich zur Copula. Mehr als 1000 befruchtete Eier wurden im Herbste abgelegt und ebensoviel Räupchen wim- melten im Frühjahr darauf in den Raupengläsern. Ich konnte diesen Segen gar nicht voll ausnutzen. Allen Räupchen bis auf 500 Stück schenkte ich die Freiheit. Die zurückbehaltenen brachten 400 Stück tadellose Falter: Tauschwert 1600 M. Ähnliche Erfolge wurden mit Polia rufocincta, xanthomista usw. erzielt.

Eine weitere Vermehrung durch Inzucht führte zu Entartung, ergab unbeiruchtete Eier, schwächliche Raupen, verkrüppelte Falter und wurde daher ein- gestellt. Auf Seite 45 des so vortrefflichen Buches unseres Altmeisters Prof. Dr. Standfuß: Handbuch der paläarktischen Groß-Schmetterlinge, sind eine eroße Zahl von Familien angeführt, welche durch Copula vermehrt werden können.

Und nun zu Cerura furcula. Um diese anschei- nend seltener werdende Art zu vermehren, muß man die Kokons derselben aufsuchen. Ich finde die- selben hier an Buchenstämmen, an denen sie die Raupe in den Vertiefungen der Rinde, wie aufge- platzten Stellen und eingeschnittenen Namen usw. aniertigt. Sie sind aber auch an anderen Bäumen, namentlich in der Rinde der Birke zu haben. Die geeignetste Zeit zum Aufsuchen der furcula-Kokons ist der Monat Oktober. Später findet man die Kokons meist zerstört und der Puppe beraubt. Unsere bunt- uniformierte Waldpolizei, der Specht, der Kleiber und die Meise ‚haben dann damit aufgeräumit, die Puppen als leckere Mahlzeit verspeist. Bei dem von mir vielfach vorgenommenen „Raupenklopfen‘ ist mir niemals eine Raupe von /urcula als Beute in den Schirm gefallen. Sie führt ihr Dasein jedenfalls

“auf den höchsten, dem grellen warmen Sonnenlichte

sich darbietenden Zweigen. Dafür spricht der Um- stand, daß am schnellsten und besten bei meinen Zuchten aus dem Ei diejenigen Raupen sich ent- wickelt haben, die nicht auf beschatteten Zweigen

untergebracht wurden. Ich fand hier im ersten Jahre, in welchem ich nach furcula suchte, 32 Stück Ko- kons, die ich mit einem scharfen Messer aus der Rinde des Stammes entfernte. Nachdem sie den Win- ter über im Freien gehalten und wiederholt an- ‚gefeuchtet worden waren, ergaben sie in einem etwa ein Kubikmeter großen, mit weißer Gaze beklebten Flugkäftig Mitte Mai des nächsten Jahres die Falter, und zwar zuerst Yo. dann kamen auch O9. Sie schlüpfen des Vormittags, kriechen, um sich voll zu entwickeln und die Flügel zu trocknen, an den Wänden des Käligs empor. In dar Dämmerung des warmen Maienabends berinnen aie Tierchen leben- die zu werden, und mit Freude schaut der Beobachter den eigentümlichen Flugbewegungen zu, voll Erwar- tung, ob die gewünschte Kopula eintreten wird. Bald ist auch ein ©, welches mit zitternden Flüseln in ruhiger Stellung, dem Dranse der Natur folgend, auf einen Liebhaber wartet, von solchen umringt. Durch ganz merkwürdige, einem Balztanz ähnliche Drehungen und Wendungen, suchen die g'’o° einan- der bei der Schönen den Rang abzulaufen. Und ‚ehe man sich’s versieht,. ist das erwünschte Ereig- nis eingetreten. Nach einigen Stunden tritt im Käfig Ruhe ein. Dann schneidet man, um das in Kopula befindliche Pärchen nicht zu stören, mit einer Schere das Stück Gaze, auf welchem sich das Pärchen be- findet, heraus und legt es in einen kleineren Käfig, in dem das © später die Eier ablegen soll. Ich habe niemals 2 OO in einem Käfig zur Eiablage ver- ‚einigt, um zur Vermeidung späterer Inzucht die Rau- ‚pen der verschiedenen Gelege auseinanderzuhalten. In der Abenddämmerung schreitet dann das O zu ‚dem erireulichen Geschäfte und schenkt dem Züch- ter innerhalb 4 bis 5 Tagen im Durchschnitt 120 Stück halbkugelförmiger, stumpf tiefschwarz ge- färbter Eier, welche mit der Basis überall an Decken und Wänden des. Käfigs angeheitet werden. Ohne Nahrung aufzunehmen geht das Tierchen nach Er- -füllung seines Lebenszweckes ein. 50, welche nur eine Kopula durchgemacht haben, sind meist ganz unverletzt und wohl für die Sammlung zu verwenden.

Etwas beschädigte Yo kann man zu einer zwei- -ten und dritten Kopula zulassen, ohne daß die da- -durch befruchteten Eier irgendwie in ihrer Güte einbüßen. Die sehr zerstreut sitzenden Eier entferne “ich mit einem feuchten Pinsel und bringe dieselben eng nmebeneinander, etwa zu Dutzenden vereinigt, auf ein Stück mit Wasser angefeuchteter Gaze, wo sie, sobald letztere trocken geworden ist, fest auf- kleben. Es ist hierbei ganz gleichgültig, mit welcher Fläche die Eier aufliegen; die kleinen Räupchen -iressen sich doch durch ihre Eischale hindurch. "Sobald die ersten Tierchen dem Ei entschlüpfen, was nach etwa 14 Tagen eintritt, bindet man das mit Eiern beklebte Gazestück auf den Futterzweig und zieht einen Gazebeutel darüber, nachdem man .den Zweig durch tüchtiges Klopfen von allem Un- geziefer befreit und ein genügend großes Stück Rinde ‚alter Weiden beigefügt hat. Ich bringe in einen Beutel nur so viel Eier, als Raupen für ihre Lebens- zeit genügend Futter am Zweige finden, wodurch ein Umbetten der Raupen überflüssig wird. Ich hatte einmal einen Zweig nicht genügend vom Ungeziefer befreit, sah später an demselben sich keine Raupen entwickeln und fand dafür bei einer eingehenderen Prüfung keine Raupen, dafür aber zwei Ohrwürmer, welche nur die Raupenschwänzchen übrig gelassen "hatten, die immer paarweise auf der Oberseite der Blätter liegend einen recht betrübenden Eindruck machten.

3

Wie ich oben schon andeutete, habe ich Ver- suche hinsichtlich der Unterbringung der Raupen bezw. Eier gemacht, sowohl hinsichtlich des Futter- baumes wie der Art der Beschattung der Zweige. Auch habe ich die Zucht der Raupen im Zimmer vorgenommen. Als Futter wurden Zitterpappel, Buche und Birken verwandt. Auf der Zitterpappel gediehen die Raupen am besten. Auf beschatteten Zweigen war die Entwicklung eine sehr langsame, und ein Wandel trat erst ein, wenn die zurückgeblie- benen Tierchen auf besonnte Zweige übertragen wurden. Auch die Zucht im Zimmer lieferte nicht so gute Resultate. Die Raupen sind sehr schwerfällig und verlassen nur notgedrungen ihren alten Futter- platz, von dem sie mit der Hand, ohne sie zu ver- letzen, nicht abgenommen werden können.

Die Lebenszeit der Raupe bis zur Verpuppung ist eine sehr verschiedene, je nach der Art des Futter- platzes, wie es sich ja auch aus meiner obigen Darstel- lung ergibt. Ich hatte schon nach 35 Tagen von auf besonnten Zitterpappelzweigen gezogenen Raupen Puppen, die noch in demselben Jahre eine 2. Ge- neration Falter mit Eiern, Raupen und Puppen er- gaben, während andere aus demselben Gelege erst im August sich verpuppten. Die Verpuppung ge- schieht dann in einer von den Raupen genagten Aus- höhlung der Weidenrinde, welche sie mit Gespinst und dem durch Benagen der Rinde gewonnenen Stoff, der nächsten Umgebung sehr ähnlich, über- decken. Im Freien ahmen sie mit dem Bau des Kokons die Stammrinde oft so täuschend nach, daß sie nur dem geübteren Auge auffindbar sind und nicht selten selbst den Spechten entgehen. N

Damit wäre der Kreislauf der Zucht geschlossen ; ich bin wieder bei dem Kokon angekommen, von dem ich ausging. Ich möchte zum Schluß nur noch hinzufügen, daß die Falter der von mir in der Ge- Tangenschaft gezogenen Raupen regelmäßig erheblich bis zu 20. Tagen später erschienen, als die der aus dem Freien eingetragenen Kokons, so daß es mir niemals glückte, meine Zuchten durch Blut- aufirischung mittelst Faltern aus dem Freien zu kräftigen.

Psychiden-Hybriden und deren Aufzucht.

Nach mehrjährigen Versuchen ist es mir ge- lungen, einige Species von Psychiden zur Kopula zu bringen und durch Zucht einige wenige Falter zu erhalten.

Die Herren, die sich mit der Aufzucht von Psy- chiden beiaßten, werden es verstehen, welche Mühe ein derartiges Unternehmen erfordert.

; Die Kopula.

Die weiblichen Säcke der einen Art wurden jedes Stück für sich in kleinen Behältern aufbewahrt, um keine unerwünschte Kopula zu gestatten. War das © geschlüpft, so wurde es aus dem Sack ge- nommen und mehrere QQ der Art, von welcher das © stammte, durch denselben gezogen, um möglichst die spezilische Witterung für die Art herzustellen. Nun kam das © wieder in den Sack und 1—2 ver- krüppelte Yo kamen zur Kopula in den Raum. Die Yo stiegen sehr bald am weiblichen Sack hin und her, indem sie auffällig mit den Fühlern umher- fächelten, und kurze Zeit darauf drangen sie mit dem Hinterleib in die Röhre ein, worauf die Ko- pula in ca. 5 Minuten vollendet wurde. Heraus- gefallene in Säcken lebende O2 wurden von irem- den Arten nicht angenommen, wahrscheinlich wurde der Betrug bemerkt; nur die Arten der Gattung

Fumea machten eine Ausnahme hiervon; denn hier trat fast stets Kopula ein, doch hatte ich auch hier die Vorsicht gebraucht, daß ich die bestimmten 99 mit. solchen der anderen Art ordentlich bestrichen hatte.

Zur Copula kamen villosella Q mit unicolor &, crassiorella Q mit betulina &, comitella Q mit se- pium &, mediterranea 2 mit tenella &, deutsche helix 2 mit crenulella &. Eine Befruchtung mit Hervorbringen von lebensfähigen Eiern trat ein bei: villosella X unicolor, crassiorella X betulina, comi- tella x sepium.

Falter bekam ich 1 & villosella X unicolor, 4% 2% crassiorella X betulina. Comitella X se- pium fand ich nicht wieder.

Die Aufzucht.

Da bekanntlich die Psychiden nur sehr schwer zu züchten sind, griff ich zur Freilandzucht und kamen mir die Alpentäler der Südschweiz, wo in einer gewissen Höhe die Stammeltern ‚nicht vor- kamen, sehr zunutze. Natürlich trat aber der Uebel- stand ein, daß von mehreren Tausenden ausgesetzter Säckchen nur einige wenige trotz tagelangen Suchens mir wieder in die Hände fielen.

Eine schon fast bis zum Anspinnen gebrachte Zucht in einem Drahtkäfig wurde mir in der Heide östlich Nürnbergs von Bubenhand zerstört und gin- gen für die Wissenschaft über 60 villosella 9 X uni- color S-Bastarde verloren.

Die Ausführung einer Copula ist nur möglich, wenn man über beide Arten massenhaft verfügt; außerdem müssen beide Arten von solchen Gegen- den stammen, daß sie zu gleicher Zeit schlüpfen, denn viele Männchen leben nur sehr kurze Zeit; so zum Beispiel sind die crenulella oder tenella So Tast stets morgens tot.

Aus Bayern stammende helix O9 gab ich zu erenulella 5; doch ist hier keine Kopula ein- getreten. Ich glaube hieraus und aus der Ver- schiedenheit beider Säcke auf Verschiedenheit dieser Arten schließen zu müssen. Dieser Ansicht trat Herr Professor Spuler, der die Liebenswürdigkeit hatte, sich mit den Hybriden und obiger Angelegen- heit zu befassen, entgegen. Er glaubte, daß viel- mehr durch die viele Generationen hindurch statt- gefundene Parthenogenesis allmählich die das 5 anziehenden Parfüms dem 9 verloren gegangen wä- ren, vielleicht im Darwinschen Sinne durch Nicht- gebrauch.

Beschreibung der Bastarde. crassiorella 2 X betulina J.

3 & leider in meiner Abwesenheit abgefilogen, 1 © gut erhalten.

Alle vier Falter sind kleiner als die Stammeltern, die Fühlerzähne sind zarter und nur halb so lang wie bei crassiorella, also fast fadenförmig. Die Fär- bung des einen % ist die von subflavella, also ganz hell gelbgrau, Fransen licht, fast weißlich. An der Flügelspitze der Vorderflügel treten die Adern scharf hervor und erkennt man hierin das Merkmal der Mutter.

Der Sack gleicht dem von casta 5, ist also sparrig mit Halmen bekleidet, aber nicht so groß wie der von crassiorella.

unicolor 3 x‘ villosella 2. ,

1 5. Flügelfärbung ist die von villosella, nur sind die Fransen nicht dunkler als die Flügel- schuppen und nicht so lang wie bei villosella.

Fühlerzähne und -länge gleichen denen von unicolor. Der Körperbau hält die Wage zwischen dem ro-

busten villosella und dem schwächlichen unicolor &- Thoraxbehaarung ist die weißliche frisch geschlüpf-. ter unicolor GO.

Der Sack erinnert mit seiner Größe, Bekleidung“ und schwarzer Puppenhülse an villosella, mit sei- ner langen Röhre aber an unicolor.

Leider bin ich nicht mehr im Besitz von Hun-- derten von Psychidensäcken, die ich für derartige‘ Versuche opfern könnte, und lege deshalb den Her- ren, die diese Gruppe in Anzahl zur Verfügung haben, diese Angelegenheit ans Herz. Ich habe ja nur schwache Eriolge aufzuweisen; anderen Herren mit größerer Uebung werden diese Versuche gewiß: besser gelingen. i

Dr. W. Trautmann.

Fumsa subflavella Mill.

Bezugnehmend auf den Artikel des Herrn Dr. W. Trautmann über Fumea subflavella Mill. (Seite 367 dieser Zeitschrift), in welchem die Vermutung ausgesprochen wird, daß wohl'm keiner Sammlung ein Falter dieser Art mehr existiere, gebe ich be- kannt, daß ich alle Psychiden des Herrn P. Mil- liere erbte und auch die Originale der Fumea sub- flavella noch besitze. Der liebenswürdige Mann teilte seine große Schmetterlings-Sammlung und hinterließ Sr. H. dem Fürsten Ferdinand von Bul- garien die Macrolepidopteren mit Ausnahme der Psychiden, Herrn Ragonat die Microlepidopteren und mir die Psychiden und die Sackträger der Tineiden.

Ich besitze also nicht nur die Originale Millie- res, sondern auch die originalen Stücke Bruand’s, Guenee’s und anderer, welche in seiner Sammlung vertreten waren und noch sind. Mit Milliere war ich stets in wissenschaftlicher Beziehung und habe dies seinerzeit in den Annales de la Societe entomo- logique bekannt gemacht.

Dr. F. J. M. Heylaerts, Breda.

Einige Bemerkungen über die Insektenflügel. Von Otto Meißner, Potsdam.

1. Nicht gerade zahlreich sind die Tierklassen, die sich das Reich der Lüfte erschlossen haben. Sieht man von den kaum hierher zu rechnenden fliegenden Fischen und Eidechsen ab sowie von jenen Spinnen, die im Herbste in ihren als „Alt- weibersommer‘“ bekannten Gespinsten Luftreisen unternehmen, bei denen sie sich, wie der Mensch im gewöhnlichen .Luftballon, auf Gnade und Un- gnade den Luitströmungen überlassen müssen so bleiben nur Fledermäuse, Vögel und Insekten übrig.*) Ueber die Flugwerkzeuge letztgenannter Tiere wollen wir nachstehend einige Bemerkungen machen.

2, Stammesgeschichtliche Entste- hung der Insektenflügel. Die ältesten In- sekten waren, als Abkömmlinge von Ringelwürmern, flügellos, und noch heute zeigt die Gruppe der Ja- pygiden (Zuckergast) und Poduriden (Glet- scherfloh) auch im vollkommenen Zustande keine Andeutung von Flügeln, weshalb sie als „pri- mär Flügellose‘“ allen andern Insektenordnungen gegenübergestellt werden, unter denen es ja auch vereinzelte gibt, die ihre Flügel im Laufe der Zeit wieder bis auf geringe Reste eingebüßt haben.

Wie nun die Flügel bei den Insekten allmählich entstanden sind, darüber ist man heute noch sehr:

*) Bakterien und ähnliche niedrige, tierische und pflanz-- liche Organismen, die wegen ihrer Kleinheit und Leichtigkeit: lange Zeit in der Luft sich schwebend erhalten können, ge- hören natürlich auch nicht hierher.

5

1. Beilage zu No. 1. 2. Jahrgang.

im Unklaren. Vielleicht sind es ursprünglich von "Tracheen (den jetzigen Adern) durchzogene At- mungsorgane wasserbewohnender Kerie gewesen, die dann bei der Wanderung dieser Tiere aufs Land als Fallschirme wirkten und nach und nach immer vollkommener ausgestattet wurden. Bei land- bewohnenden Insekten dürften sie sich kaum von den ersten Anfängen an entwickelt haben, denn schwerlich würden minimale Flügelansätze für: die damit ausgestatteten Tiere hinreichenden Selek- tionswert besitzen, um bei der Vermischung mit den unverändert gebliebenen, bei der Pammixie, iixiert werden zu können. Nach jener Annahme aber ‚hätte es sich mit den Insektenflügeln so verhalten, wie mit der Lunge der höheren Wirbeltiere (von den Amphibien aufwärts). Auch diese wäre bei Landbewohnern nie entstanden, da sie, um überhaupt nützen zu können, schon relativ groß sein mußte: das war sie aber, weil sie den wasser- bewohnenden Vorfahren der Amphibien usw. einem anderen Zwecke, als Schwimmblase nämlich, diente. Ihre Weiterentwicklung ist ‚dann leicht verständlich.

3. Die Anzahl der Flügel. Bei dem bilateralen (zweiseitigen) Bau der Arthropoden der überhaupt im Tierreich dominiert, im Gegen- satze zum Pflanzenreiche und zu den Kristallen ist es natürlich, daß die Flügel paarweise vor- handen sind. Heutzutage hat nın kein norma- les Insekt mehr als 2 Flügelpaare, und wohl schon lange verhält es sich so. Nur in der weit zurückliegenden Steinkohlenzeit lebte ein Or- -thopteron, Zithomanthis carbonaria Zittel, das auch am vordersten Brustringe Flügel trug, die aber auch schon stark in Rückbildung begriffen waren. Somit wird das „erste‘“ Flügelpaar wohl schon in der Permzeit völlig rudimentär geworden sein; einige Insekten haben Anhängsel am Prothorax, in denen man die letzten Reste jenes Flügelpaars zu finden meint.

Viele gute Flieger aber haben überhaupt nur ein einziges Flügelpaar (das mittlere), so die ‚ganze Ordnung der Diptera, die ja danach be- nannt ist, außerdem noch einige Cocciden (Schild- läuse), Ephemeriden u. a. Die Natur sucht eben ‚bildlich gesprochen!) möglichst zu spa- ren, und ein einziges, mit starken Muskeln ver- -sehenes Flügelpaar macht das Tier offenbar min- destens ebenso flugfähig wie zwei schwächere, bei denen leicht durch nicht genau gleichmäßiges Ar- beiten Kräfteverluste entstehen können. Daß dieses keine leere Vermutung, beweisen die Haft- borsten, die sich bei vielen Hymenopteren, Lepi- dopteren u. a. finden, die offenbar dazu dienen sollen, daß Vorder- und Hinterflügel als eine einheit- liche Fläche wirken.

Meist ist das hintere Flügelpaar kleiner; nur bei den schmarotzenden Strepsipteren ist es allein entwickelt und das vordere (am mittleren Brustringe) zu Schüppchen verkümmert.

4. Deckflügel. Bei vielen vierflügeligen Insekten sind bekanntlich die Vorderflügel mehr oder weniger chitinhart geworden; außer bei den Coleop-

teren bei vielen Orthopteren, Heteropteren (Wan-

=) Die Teleologie der alten Naturforscher ist auch heute ‚noch als Pseudoteleologie von grosem heu- -ristischen Werte.

zu

zen), den Dermatopteren (Ohrwürmern) u. a. In der Ruhelage sind dann die häutigen, allein zum Fluge befähigenden Hinterflügel zusammengefaltet unter den Deckflügeln (meist vollständig) verborgen. So sind sie zweifellos gegen äußere Schädigungen wohl geschützt, aber es scheint doch, als ob der Flug aller dieser Tiere im Vergleich zu dem der andern etwas schwerlälliger von statten ginge. An- hänger des Lamarckschen Prinzips, daß Nicht- übung die Organe nicht nur individuell, sondern auch bei der Nachkommenschaft schwächt und verklei- nert, werden in jener Behinderung des Fluges den Grund dafür finden, daß bei den mit Deckflügeln versehenen Ordnungen viele Arten gar keine Hinter- flügel mehr haben und so des Flugvermögens wie- der verloren gegangen sind. (Weiteres unter Nr. 8). (Fortsetzung folgt.)

Weiteres zur Melanismus-Frage.

Bezugnehmend ‘auf die beiden Publikationen über Melanismus in Nr. 40 und Nr. 49 dieser Zeit- schriitt möchte ich meine unmaßgebliche Meinung zum Ausdruck gelangen lassen, daß mir die Ansicht, die Schwarzfärbung vieler Falter werde durch von der Industrie erzeugte Stofie verursacht, nicht ganz wahrscheinlich erscheint.

Ich stütze mich dabei hauptsächlich auf die Tatsache, daß in den schweizerischen Alpen, weit entiernt vom Ruße aller Schornsteine, eine große Menge von Faltern stark melanotische Anwand- lungen zeigt. Ich erinnere dabei nur an einige we- nige Arten, die ich im Steinenthal bei Berisal an der Simplonstraße in einer Höhe von ungefähr 1500 m erbeutet habe. Es sind dies Pier. napi var. bryoniae, Lyc. arion L. var. obscura, Mel. didyma var. alpina in beinahe einfarbig tiefschwarzen Stücken. Das- selbe ist der Fall mit einem 5 von Ematurga atomaria, bei dem die schwarze Beschuppung jede andere Färbung wie mit Ruß überdeckt. Sogar eine Femaris fuciformis (bombylifosmis Ochs.) fiel mir dort in die Hände, deren Glasfelder so dick rußschwarz sind, daß das Tier auf den ersten Blick eher den Eindruck einer etwas dunkel geratenen Macroglossa croatica, als den einer /uciformis macht. Ich glaube, daß die Ursache dieser Verdunke- lung, die ja auch bei vielen anderen alpinen Arten, wie Lasiocampa quercus var. alpina, sich in deutlichem Maße zeigt, eher in der starken Kälte zu suchen ist, der die Tiere dieser Regionen während des größten Teiles vom Jahre ausgesetzt sind. Ich möchte dabei nur noch an Vanessa urticae var. polaris erinnern, bei der ja die schwarze Färbung, wie auch bei an- deren nordischen Varietäten, sich stark ausbreitet.

Daß speziell der Nordosten und auch Nord- westen von Deutschland reich an melatonischen For- men ist, ich erinnere nur an Coscinia striata var. melanoptera, Aglia tau ab. lugens, Dasychira pu- dibund« ab. concolor, Lymantria monacha ab. ere- mita, die in Süddeutschland und der schweiz. Hoch- ebene sehr selten sind, mag wohl auf die gleichen Ursachen zurückzuführen sein. Auch dort sind ja die Winter viel strenger und länger als an den Orten, an denen diese Formen fehlen. Ueberdies habe ich hier schon nach außerordentlich strengen und lan- gen Wintern ziemlich viel melanotische Formen beobachtet, während nach milden Wintern davon nichts zu finden war.

Ich glaube, daß die Schwarzfärbung der meisten Arten also hauptsächlich auf niedrige Temperaturen zurückzuführen ist und nicht auf die Industrie, die uns ja auch die schwarzen Pigmente in ziemlich unverdaulicher Form liefert.

Eleg, März 1908.

Dr. phil. August Gramann.

Bemerkungen zu Otto Meissners „Dipterologischen Bemerkungen‘“ über das Summen der Dipteren.

Es sei mir gestattet, zunächst die Stelle des Auf- satzes zu zitieren, gegen die ich etwas einzuwenden mir erlaube: „Viele Zweiflügler summen, wie manche andere Kerfe, beim Fluge. Beim Fluge, aber nicht infolge des Fluges. Der summende Ton wird vielmehr bekanntermaßen von den Schwingern her- vorgebracht. Es gibt auch Fliegen, wie die Syr- phiden, die lautlos fliegen, beim Fangen aber stark zu brummen anfangen.“

Es ist mir neu, daß der Ton der summenden Dip- teren „bekanntermaßen von den Schwingern hervor- gebracht“ wird. Zwar weiß ich nicht, ob der Herr Verfasser und ich das Wort „Schwinger‘“ als Zei- chen für denselben Begriff gebrauchen, es war mir bisher als Terminus unbekannt, auch belehren mich Leunis u. a. nicht über die Synonyme doch glaube ich, daß damit die sogenannten Halteren oder Schwingkölbchen gemeint sind, die heute wohl all- gemein auf Grund von Experimenten und histolo- gischen Befunden als Balancesinnesorgane angesehen werden. Ist diese Annahme richtig, so ist mir un- klar, auf Grund welcher Beobachtungen oder Lite- raturstellen die Behauptung ausgesprochen wurde. Hat doch schon Burmeister in seiner jetzt wohl längst als veraltet betrachteten „Entomologie‘‘ von Experimenten ausführlichen Bericht erstattet, die dar- tun, daß die Halteren auf die Tonproduktion keinen Einfluß haben. Ich habe die fragliche Stelle (p. 508. Bd. I.) auf p. 125—127 der Seperatausgabe meiner „Lautapparate der Insekten‘ (erschienen bei W. Junk, Berlin) zitiert. Auch H. Landois’ und meine eigenen Experimente ergaben, daß die Halteren an der Tonerzeugung höchstens in ganz untergeord- netem Maße beteiligt sind.

Ferner vermisse ich den Beweis oder wenigstens einige Belege für die meines Erachtens unrichtige Behauptung, der Ton erschalle „beim Fluge, aber nicht infolge des Fluges“. Als Begründung kann darauf folgende Stelle angesehen werden: „Es gibt auch Fliegen, wie die Syrphiden, die lautlos fliegen, beim Fangen (so im Text) aber stark zu brummen anfangen.‘ Diese Beobachtung kann ich nur zum Teil bestätigen: beim „Schweben‘ der Syrphiden habe ich bisher noch keinen Ton gehört, wohl aber beim Davonfliegen der Tiere. Ich erinnere mich sehr deutlich, daß die Individuen von Eristalis tenax L. einer unserer häufigsten Syrphiden die oft zahlreich auf Aborten zu finden sind, mit lautem Summer umherfliegen. Dieselbe Beobachtung ist auch von anderen gemacht; z. B. lese ich bei Leunis (II. p. 409) von Eristalis: „fliegen mit starkem Ge- summe‘“. Meißner vergleicht ihren Ton der Höhe nach mit dem der Bienen. Daß der Ton beim Schwe- ben der Fliegen nicht zu hören ist (der wohl auch bei einigen kleinen Arten ganz fehlen mag), erklärt sich wahrscheinlich aus der geringen Amplitude der Flügelbewegungen und daraus, daß die leisen Töne in der freien Natur weniger gut perzipiert werden als z. B. die von Musciden, Culiciden in den Woh-

nungen hervorgebrachten, weil sie dort verhaller oder vom Rauschen der Blätter übertönt werden.

Sollte indessen eine andere Hypothese über die Entstehung des Flugtones vom Verfasser der „Dipt. Ben.‘ gemeint sein, als ich sie aus seinen Zeilen herausgelesen habe, so wäre ich für die Mitteilung derselben sehr dankbar. Wie es scheint, schöpft Herr Meißner aus anderen Literaturquellen als sie mir s. Z. bei Bearbeitung des „Flugtones der Insekten“ zu- gänglich waren, und zwar aus solchen, die wenig zuverlässig sind: Weder hat der Ton a 435 Schwin- gungen pro Sekunde, sondern etwa 220, noch wird. berichtet, daß durch a ein Mückenschwarm in eine plötzliche Zuckung versetzt wird (soweit mir die Literatur bekannt ist), sondern beim Ertönen von e“ oder d“. Die Schwingungszahlen dieser Töne und. des Flugtones der Mücken (cr. 600 pro Sekunde). stimmen nämlich näherungsweise überein.

Vielleicht darf ich auf die interessante Anekdote hinweisen, die Landois über das Anlocken der Mücken erzählt, und die ich p. 166. der Seperat- ausgabe meiner „Lautapparate‘ zitiert habe. [Leider sind durch die zu große Diensteifrigkeit des Setzers die Notenzeichen d‘“ und e‘“ in „d“ und „e“ verwandelt worden, was ich zu meinem Be- dauern erst jetzt bemerke. Doch sind p. 21 die Schwingungszahlen richtig angegeben.]

Wendisch-Buchholz, den 21. März 1908.

O. Prochnow.

Kleine Mitteilungen. Köderfang im November.

Von meinem Köderfange am 31. Oktober 1907 hatte ich eine Anzahl nur schwach betäubter Eulen mit nach Hause genommen und sie zwischen Doppel- fenster auf frisches Waldmoos ausgesetzt. Hier sind sie in der Morgen- und Abenddämmerung recht munter, kommen aber auch im Mittagssonnenschein aus ihrem Versteck im Moose hervor, saugen den auf einem Stückchen Baumrinde ausgelegten Köder auf und verschwinden nach der Sättigung wieder im Moose.

Gestern, am 13. November, waren sie abends wieder recht munter, obgleich wir nur 5 Grad Wärme nach Celsius hatten. Ich versuchte daher, ob das Ködern im Freien noch Erfolg haben werde. Und richtig! Obgleich der Himmel bedeckt und die Luft nebelig war, auch zuweilen ein leichter Staubregen jiel, kamen doch einige Scopelosoma satellitia und Orrhodia vaccinii an den Köder am Waldessaume.

Am 3. November 1905 fing ich noch bei Ballen- stedt am Harz Calocampa vetusta und exoleta, Agrotis ypsilon, Xylina furcifera u. a.

Ich ködere nur mit Saft und etwas Apfeläther,, und zwar entweder mit einer Mischung von Rüben- und Apfelsaft oder, wie gegenwärtig, mit dem bei der Johannisbeerwein-Bereitung während der Gä- rung übergelaufenen Safte.

Wer Gelegenheit hat, an zwei Waldsäumen in. nicht gleicher Windrichtung gleichzeitig zu ködern, wird die Beobachtung machen, daß der Anflug oft ein recht ungleicher ist; während an der einen Seite nichts gefangen wird, ist der Anflug an der andern Seite reichlich.

E. Grauert, Zerbst i. Anhalt.

Bücherbsprechungen. Großschmetterlinge und Raupen Mit- teleuropas mit besonderer Berücksichtigung der biologischen Verhältnisse, herausgegeben vom

Professor Dr. Kurt Lampert. Verlag von J. F. Schreiber in Eßlingen und München. Preis der Lieferung 75 Pf. oder 90 Heller.

Die große Verbreitung, welche das Lampertsche Werk bereits gefunden hat, ist ein Beweis dafür, daß der Vertasser das Richtige getroffen hat. Es fehlte bisher für den Anfänger und für die reifere Jugend an einem Werke, welches bei mäßigem Preise als ein zuverlässiger Ratgeber bei Ausübung der Sammel- tätigkeit, beim Bestimmen der Schmetterlinge und Raupen, bei Anlage der Sammlung usw. dienen konnte. Wenn man jetzt geiragt wird: Welches Buch ist geeignet, mich in die Praxis eines Schmetterlings- Sammlers einzuführen? so kann man um die Ant- wort nicht mehr verlegen sein; man wird dem Fra- genden Lamperts Werk nennen. Aber auch vorge- schrittene Sammler werden mancherlei Anregung: und Belehrung darin finden.

Im einleitenden Teile wird der Sammler mit dem bekannt gemacht, was er unbedingt wissen muß. Diese Belehrungen werden in einer ansprechenden, leicht verständlichen Form gegeben und zeugen von der reichen, wissenschaftlichen Sachkenntnis des Verfassers. Ihr Verständnis wird durch zahlreiche Abbildungen im Texte wesentlich unterstüzt und er- leichtert.

Nachdem der Bau der Insekten im allgemeinen kurz beschrieben worden ist, wird. der Bau des Schmetterlingskörpers eingehender besprochen und besonders den Flügeln und ihrer Schuppenbeklei- dung eine interessante Abhandlung gewidmet. Daran schließt sich eine Betrachtung der Entwicklungs- stufen vom Ei zur Raupe, zur Puppe und zum Falter, wobei die Struktur der Eier, der Bau, die Bekleidung und die morphologischen Verhältnisse der Raupen, ihre Lebensweise und Lebensdauer, die Gestalt der Puppen und die Art der Verpuppung, sowie die Lebensgewohnheiten der Schmetterlinge eine um- fassende Schilderung erfahren und Schutzfärbung, sexueller und Saison-Dimorphismus, Melanismus

7

und Albinismus gebührende Berücksichtigung finden. Erwähnt werden ferner die Wanderungen der Tag- schmetterlinge, der Nutzen und Schaden der Rau- pen, ihre Feinde und Krankheiten. Es folgen Be- trachtungen über die zeitliche und: räumliche Ver- breitung der Schmetterlinge, über Stammesgeschichte und Systematik, bei welcher Gelegenheit der Ver- fasser erklärt, daß er sich bezüglich der letzteren der 3. Ausgabe des Katalogs von Staudinger und Rebel angeschlossen hat.

Besondere Beachtung wird der Anfänger dem letzten Abschnitte des einleitenden Teiles schenken müssen, welcher „Fang und Sammeltechnik‘ über- schrieben ist und den Präparator am K. Naturalien- kabinett zu Stuttgart, Herrn Fischer, zum Verfasser hat.

Der systematische Teil bringt zuerst eine Ueber- sicht der Familienreihenfolge der mitteleuropäischen Großschmetterlinge, welche selbstverständlich mit den Papilioniden beginnt und mit den Hepialiden schließt. Die Unterschiede der einzelnen Familien und Gattungen werden kurz, aber treffend und aus- reichend angegeben. Es geschieht dies stets an der Stelle, wo eine neue Familie oder Gattung autftritt. Wir hätten gewünscht, daß eine vielleicht analytische Uebersicht der Familien und Gattungen voraus- geschickt worden wäre.

Die Beschreibung der Arten ist knapp und klar und berücksichtigt vor allem die wesent- lichen Unterscheidungs-Merkmale, so daß es auch dem noch wenig Geübten mit Hilfe der vorzüglichen Abbildungen leicht wird, ihm noch unbekannte Schmetterlinge sicher zu bestimmen.

So erfüllt das Werk seinen Zweck nach jeder Richtung hin. Sein gediegener Inhalt und sein billiger Preis stehen in dieser glücklichen Vereinigung bis jetzt unerreicht da. Darum wünschen wir dem Lam- pertschen Werke die wohlverdiente weiteste Ver- breitung. AUF:

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ELSE

Guben, den 11. April 1908.

Organ des Internationalen

No. 2.

nTERNATIONA LE

EntomoLOGISCHE >> Nr ZEITSC

2. Jahrgang.

FT

Entomoloden- Bundes.

Herausgegeben unter Mitarbeit bedeutender Entomologen.

Die „Internationale Entomologische Zeitschrift“ erscheint jeden Sonnabend.

Abonnements nehmen alle Postanstalten und Buchhandlungen zum Preise von 1,50 M. vierteljährlich an, ebenso der Verlag in Guben bei direkter portofreier Kreuzband-Zusendung.

Insertionspreis für die 3 gespaltene Petitzeile oder deren Raum 20 Pf.

Abonnenten haben für ihre entomologischen Anzeigen

vierteljährlich 25 Zeilen frei.

Schluss der Inseraten-Annahme jeden Mittwoch früh 7 Uhr.

Inhalt:

Neue palaearktische Satyriden. Ein für Indien neue Satyride. Das ganz blaue Q von Lycaena icarus Rott. mit roten Randflecken ab. 9 amethystina m.

(Sehluß).. Das Verzeichnis der von ©. H. Beske

in den Jahren 1826 bis. 1829 bei Hamburg gefundenen Lepidopteren. (Fortsetzung). Die Zucht von Callo- samia promethea Dru. Einige Bemerkungen über die Insektenflügel. (Schluß). Briefkasten.

Neue palaearktische Satyriden. Von H. Sruhstorfer. Pararge hiera praegrandis nov. subspec.

Südrussische Exemplare sind habituell wesent- lich größer als z. B. solche aus Savoyen, deren Sub- marginalilecke dunkler rotbraun, die rote Ozellen- peripherie bei YQ sowie die Vorderflügelbinde der ©Q, namentlich im Verhältnis zur Größe, . viel schmäler.

Die Unterseite ist durchweg dunkler, rauch- braun statt grau. Patria: Saratow, Südrußland. 2 XI, 1 9 Juli

1907 Dr. A. Fridolin leg. (Typen in Coll. Fruhs- torfer.) !

Die nordische Form, welche Rühl bereits er- wähnt als wesentlich kleiner und von düsterer redu- zierter Gelbfärbung, nennt Bang-Haas im Katalog ominata. Ich übertrage diesen Namen auf skandi- navische Exemplare, so daß wir haben: hiera ominata Fruhstorfer, Skandinavien. hiera hiera F., Mitteleuropa. hiera praegrandis Fruhst., Südrußland.

Pararge aegeria egestas nov. subspec.

Kleiner, dunkler, ärmer an gelblichen Flecken als Exemplare aus Deutschland, Südtirol und ins- besondere aus der Schweiz. Von griechischen Stücken entfernt sich .egestas durch die mattgelbe, anstatt rotbraune Flügelsprenkelung.

Patria: Dalmatien, 3 Yo in Coll. Fruhstorfer.

Parage aegeria camoena nov. subspec.

&®. Größer als egestas, Fleckung ausgedehn- ter, aber immer noch wesentlich dunkler und na- mentlich bei den OO reduzierter als bei deutschen und schweizerischen Exemplaren.

4 WU

aegeria egerides Stdgr.,

Patria: Südtirol, Umgebung von Meran, Lana, Juli 1901, 5.50, 2 929 NH. Fruhstorfer leg.

Als typische aegeria L. betrachte ich z. Zt. Stücke aus Griechenland, die wohl mit solchen aus der Türkei etc. übereinstimmen dürften und daher mit dem Linne’schen Vaterland „Europa australio- ris‘“ in Beziehung zu bringen sind.

Wir hätten somit:

Mitteleuropa. aegeria camoena -Fruhst., Süd-Tirol. aegeria egestas Fruhst., Dalmatien. aegeria aegeria L., Ost-Europa. aegeria fortunata, Canarische Inseln.

Eumenis (Saiyrus) semele[. Die lokale Variabilität dieser Art wird viel zu wenig beachtet, was wohl daran liegen mag, daß

-sie sich nur bei relativ großen Serien mit Sicherheit

erkennen läßt.

Mir sind leider Petivers Gazophyllus und Roe- sel’s Insektenbelustigung hier nicht zugänglich, auf deren Figuren sich Linne’s Diagnose aufbaut. Den- noch wird. es kein Fehlschluß sein, die deutsche Form als typisch zu betrachten. Dann hätten wir zu behandeln:

a) semele semele L.

Dazu forma jubaris nova, Exemplare mit aus- gedehnten hellockergelben Binden auf allen Flü- geln, wie sie mir besonders ausgeprägt von Ost- preußen vorliegen.

Patria: Deutschland, Mitteleuropa.

b) semele cadmus nov. subspec.

Dies ist eine besonders große und dunkle Rasse, auf die Rühl als bei Triest vorkommend (p. 536) bereits hinweist. Die relativ schmalen Submarginal- flecke der Hinterflügel rotbraun, die Unterseite we-

sentlich dunkler und monotoner als bei deutschen Exemplaren.

Patria: Umgebung von Klausen (Type), Wallis, Simplonstraße, Zermatt, Genf, 12 Exempl. H: Fruhst.

leg.

c) semele teres nova subspec.

Die Fleckung der Oberseite aller Flügel vor- herrschend hellockergelb. Medianpartie der Hinter- flügel-Unterseite mit sehr breiter weißer Binde.

Patria: Basses Alpes, Umgebung von Digne, s 59 Coll. Fruhst.

d) semele senthes nova subspec.

(S. semele Rebel, B. E. Z. 1902, p. S9.)

Griechische Exemplare sind relativ groß, aber sehr zeichnungsarm, was auch Rebel bereits be- merkt.

Die 92 zeigen eine bleich hell ockergelbe und sehr schmale Binde der Hinterflügel. Hinterflügel- Unterseite wenig dunkler als bei Zeres mit fast ebenso breiter Medianbinde.

Patria: Taygetos, YQ Dr. A. Krüper leg.

Coenonympha typhon fermana nov. subspec. ©. Oberseite graubraun, an arcania satyrion Esp. erinnernd. Alle Flügel mit graublau beschupp- ter Basis und einer feinen gelblichen Antemarginal- linie.

Unterseite: Aehnlich /Zyphon tydeus Leech von Tibet, jedoch mit durchweg dunkelgrauer Grund- färbung. Hinterflügel bis zur Medianregion grünlich bestäubt. Zeichnung wie bei fydeus, nur ist die weißliche Subapikalbinde der Vorderflügel kürzer und nur ein Subapikalpunkt vorhanden.

Hinterflügel mit 4 submarginalen runden weißen Punkten und einem transcellularen, keilförmig drei- eckigen Fleck. Alle Flügel mit gelblicher distaler Saumbinde.

Patria: Kashgar, Aug. 2 O9 in London gekauft in Coll. Fruhstorfer.

Coenomympha pamphilus orantia nova subspec.

Diese zierliche Lokalrasse dürfte pavonina Alph. nahe stehen, gehört jedoch bestimmt zur pamphilus- Gruppe. Grundiarbe heller gelb, das Apikalauge kleiner, kaum durchscheinend.

Unterseite: Apex der Vorderflügel nur noch un- merklich grau bezogen. Medianregion der Hinter- flügel verwachsen, hellgelblich, fast bis zum Außen- saum ausgedehnt.

Patria: Kashgar, 2 Jg. Coll. Fruhstorfer.

Coenonympha hero neoperseis nov. subspec. (€. perseis Matsumura, Annot. Zool. Japon. 1906, p. 9.t. 1. f. 8. 9). Japanische Aero sind habituell größer als sibi- rische Exemplare, die weiße Binde der Unterseite aller Flügel viel breiter.

Patria: Japan, Umgebung von Sapporo.

Eine für Indien neue Satyride. Von H. Fruhstorfer.

Minois (Satyrus)actaea monocolus nov.subspec.

2. Nahe parthica Led. mit leichtdurchschim- merndem Rotbraun und großer gelber Peripherie der einzigen, apikalen Ozelle der Vorderflügel.

Hinterflügel-Oberseite monoton schwarzbraun nur mit leicht durchscheinenden schwarzen Binden der Unterseite.

Unterseite: Alle Flügel von einer kräftigen Sub- marginalbinde, die Hinterflügel auch noch von einer stark gezackten distal leicht weiß begrenzten Median- binde durchzogen. Basal- und Medianregion der Vorderflügel dunkel ockergelb, die übrige Ober- fläche aller Flügel hellgrau: mit sehr feiner rot- brauner Sprenkelung.

Patria: Kashmir, Leh, auf ca. 14000’. 1 Q Coll. Fruhstorfer.

Das Vorkommen dieser Art, die bisher östlich nur bis Persien, dem Altai und dem Achal-Tekke- Gebiet bekannt war, in Kashmir an der Südgrenze des pal. Gebiets in Vorder-Indien ist nicht weiter überraschend, sind doch nicht weniger wie 6 Minois (Satyrus, Nytha Auctores)-Arten aus dem NW.- Indien bekannt, und zwar:

Minois telephassa Hb.

Minois mniszechi baldiva Moore und

Minois mniszechi LlLehana Moore.

Minois semele dif fusa Butl.

Minois heidenreichi shandura Marsh.

Minois anthe nov. subspec. (= persephone Bing- gham.)

Minois actaea monocolus Fruhst. während

Mirois parisatis Kollar von Indien aus sich durch

Persien verbreitet hat.

Kashmir.

Das yanz hlaue 2 von Lycaena icarus Rott, mit roten Randflecken ab. 2 amethystina m.

Von M. Gillmer, Cöthen (Anhalt).

(Vgl. Entomolog. Zeitschr., Stuttgart XXI. 1907, p. 193 und p. 199. Briefkasten).

(Schluß.)

Ganz blaue icarus QQ mit roten Randflecken auf Vorder- und Hinterflügel-Oberseite, wie sie in den oben angeführten Brieikasten-Notizen erwähnt werden, hat Tutt, wie bereits eingangs bemerkt, als typisch bezeichnet und Wheeler ist ihm darin gefolgt. Letzterer hat sogar den Namen icarus verworfen und wieder die Hübner’sche Bezeichnung alexis eingeführt (Butterflies of Switzerland, 1903), weil er annimmt, daß v. Rottemburgs Name für diese ungewöhnliche (blaue) Form reserviert bleiben müsse. Dies ist aber, wie ich anfangs gezeigt habe, ein Irrtum. Der Name icarus ist für das dumkel- braune © zu verwenden und die blaue Form des Q mit roten Randflecken neu zu benennen. Ich schlage dafür den Namen

ab. 2 amethystina, n. ab.

(alis supra coeruleis, fascia marginali fulva) vor*) und ziehe dazu die Abbildungen von R. South im Entomologist XX. (1887) Pl. II. Fig. 11 u. von Ch. Oberthür in den Etudes XX. (1896) Fig. 46.

Beide Figuren zeigen je ein ganz blaues @ mit großen roten Randflecken. Ersteres stammt von Sligo (Irland), letzteres von Lambessa (Algier).

Zum Schluß gebe ich noch ein modifiziertes Variations-Schema nach Tutt aus dessen „British Butterflies‘“ (1896) p. 175, welches sich auf die ver- schiedene Färbung und Zeichnung der Oberseite des zentraleuropäischen icarus &' und Q. bezieht, und das von Wheeler 1903 zwar einerseits beschränkt, aber andererseits um die ab. @ caerulescens ver-

*) Am 6. II. 1908 schon im Entomolog. Wochenblatt 25. Jahrg. p. 23 unter diesem Namen als neue Abart ver- öffentlicht.

mehrt worden ist. Der Leser möge selbst beurteilen, ob ihm die beim Q angeführten Farbenspiele nicht zu weit gehend und daher zusammenzuziehen sind. Vollständig ist das Schema jedenfalls nicht, in der caerulea-Form aber überfüllt; vor allem muß, wenn man es akzeptiert, auch die dunkelbraune Aberra- tion des © ohne rotgelbe Randmonde benannt wer- den (= ab. fusca, n. ab.).

Beim Manne (7) werden folgende 4 Abänderungen unterschieden: 1. Rötlich blau (lilac blue) icarus Rott.

. Blaß rötlich blau (bisher nur unter der Soemmer- form) ab. pallida Tutt.

3. Glänzend blau (bright blue), sich in der Färbung

dem bellargus 5 nähernd (bisher nur unter der Frühjahrsbrut) ab. elara Tutt.

4. Rötlich blau, die Hinterflügel mit einer Reihe schwarzer Saumpunkte (die Sommerform des algerischen icarus, doch auch bei uns auf- tretend) ab. celina Aust.

166)

Beim Weibe (?) sind unter hinzurechnung der beiden oben genannten - Abänderungen nachstehende 11 Aberrationen aufzuführen, die sich jedoch auf 5—6 reduzieren lassen:

[1. Ganz braun oder schwärzlich braun, ohne rote Randtlecke (unter beiden Bruten) ab. fusca n. ab.

2. Ganz braun oder schwärzlich, mit orangefarbenen Saumflecken (typisches ©) icarus Rott., (ab. iphis Baumhauer’s Mus. ein nomen nudum).

3. Braun, mit orangefarbenen Randflecken und blaß- blauem oder weißlichem Kegelzeichen auf den Hinterflügeln ab. icarus-cuneata*) m.

Ich würde diese.-3 Abänderungen unter der ge- meinsamen Bezeichnung icarus Rott. zusammen- fassen, womit die braunen Stücke ohne Blau als

| braune Form (forma fusca) beisammen ständen.

Ihr gegenüber ständen dann die blauen For- men (forma caerulea):

4. Braun, mit glänzend blauer Basis und erloschenen roten Saumflecken (unter der Frühjahrsbrut)

ı ab.semiclara Tutt.

5. Braun, mit bis gegen die Mitte blau übergossenen Flügeln und roten Randilecken (unter beiden Bru- ten) ab. caerulescens Wheeler.

6. Blau übergossen bis nahe vor die rotgelben Saum- tlecke, Vorder- und Hinterflügel mit schwarzen

Vorderrändern, Mittelfleck der Vorderflügel deut-

| lich ab. caerulea Fuchs.

| Zwischen diese 3 Aberrationen drängen sich 3 weitere ein, die sämtlich zur ab. caerulescens zu ziehen sind; sie sind folgendermaßen gekenn- zeichnet:

7. Braun, mit bis gegen die Mitte blau übergossenen Flügeln und roten Saummonden, die Hinterflügel mit Mittelfleck und Keilzeichen ab. caerulea- cuneata Tutt.

8. Braun, überall mit rötlich blauen Schuppen durch- setzt, mit dunklem Vorderrande, mit blassem Kegel-

=) Tutt hat den Namen iphis für das braune icarus 2 gebraucht, was unrichtig ist. Er verwendet hier in der zu- sammengesetzten Bezeichnung ab. iphis-cuneata den Namens- teil iphis wiederum in dem Sinne des Artnamens icarus, wo- durch dieser Doppelname hinfällig wird. Nach Ansicht des Herrn Stichel muß der Name auf ab. euneata reduziert werden. Da wir aber unter 7 auch eine ab. caerulea-cuneata haben, empfiehlt es sich, hier die Bezeichnung icarus-cuneata zu verwenden,

11

zeichen und oft blaßblau gesäumten Orange-

| flecken ab. pallida Tutt.

9. Braun, blau durchsetzt, mit einer Reihe blaßblauer Winkelhaken auf der Innenseite des orangefar- bigen Saumbandes der Vorderflügel ab. angu- lata Tutt.

Die letzte Gruppe bilden die ganz blauen 99 mit oder ohne rotgelbe Randflecke: 10. Ganz blau, ohne schwarze Vorderränder, mit einer Reihe großer orangeroter Saumflecke auf

\ beiden Flügeln ab. amethystina, n. ab.

11. Ganz blau, mit fast oder ganz erloschenen roten Randmonden (unter der Frühjahrsbrut) ab. elara Tutt.

Cöthen (Anhalt), 27. Dezember 1907.

Das Verzeichnis der von 6. H. Beske in den Jahren 1826 his 1829 bei Hamburg gefundenen Lepidopteren.

Besprochen von M. Gillmer, Cöthen (Anhalt.) (Fortsetzung.)

42. Epinephele tithonus Linn. Von Beske als herse Hb. mit dem Synonym Zithonus Ochs. auf- geführt. Der Falter ist vorzugsweise im westlichen Teile Deutschlands verbreitet und häufig, fehlt aber einem großen Teile des nordöstlichen und dem gan- zen südöstlichen Teile desselben. Speyer gibt 1858 als Polargrenze seines Verbreitungsgebietes eine Linie an, welche in England bis zum 55% nördl. Breite reicht, von da nach Hamburg, elbabwärts bis Ludwigslust i. M. und von hier weiter nach dem Kaukasus verläuft. Die Nordostgrenze erleidet je- doch eine kleine Ausbuchtung nach Norden, weil fithonus in den Wäldern bei Skjoldnaesholm auf Seeland (Dänemark) vorkommt (Bang-Haas). Der Falter liebt blumige Abhänge, sonnige Stellen zwischen Gebüsch und Waldwiesen, saugt gern auf Quendel (Thymus serpyllum) oder um Hecken an Andorn (Marrubium vulgare). Die Angabe Boie’s, dab er auf den „Sümpfen von Borstel‘ vorkomme, versieht Speyer mit einem Fragezeichen; es sind hier jedenfalls die trockenen, buschreichen Stellen des Borsteler Moors gemeint, da der Falter nicht auf sumpfigem, sondern im Gegenteil auf trockenem, lehmigem und kalkhaltigem Boden angetroffen wird. Jedenfalls muß Zithonus zu Beske’s, wie auch zu v. Winthem’s Zeiten (denn von letzterem stammt die Angabe Boie’s) im Borsteler Moor vorgekommen, aber vielleicht schon 1855, als Tessien sein Ver- zeichnis herausgab, daselbst verschwunden gewesen sein, weil dieser nur Wandsbeck als Fundort an- führt. Jetzt kommt der Falter noch auf dem Moor bei Därsdorf vor (bei Laplace „hinter Harburg“ lau- tend).

Die erste ausführliche Naturgeschichte des £i£ho- nus- Falters hat Sepp 1763 in seinen Nederlandschen Insekten, 1. Tl. p. 22—24 gegeben; er beschreibt und bildet das Ei, die Raupe, Puppe und den Falter ab. Später haben E. Newman (1866) und Hellins diese Beschreibungen vervollständigt. Nach Hellins bildet das Ei einen aufrecht stehenden Zylinder (? Kegelstumpf), dessen Scheiteliläche sich in Form von zwei ganz niedrigen Terrassen erhebt (Sepp nennt den Scheitel flach, wie getäfelt aussehend). Die Seitenfläche formiert 16 Rippen (nach Sepp ge- wöhnlich 18), welche durch breite Auskehlungen von einander getrennt und durch schwache Querrippen verbunden sind. Die Rippen setzen sich auf dem Scheitel bis zu einer fein genetzten Mikropylarzone fort. Die Eischale ist zuerst überall blaßgelb, wird jedoch in 4-5 Tagen weißlich und bekommt licht

kastanienbraun (bräunlichgelb nach Sepp) gefärbte Flecke; von diesen befindet sich ein großer oben auf dem Scheitel, sowie ein kräftiger Fleckenring unmittelbar darunter auf der Seitenfläche; vor dem Schlüpfen der Raupe wird das Ei blaß purpurn.

Die Raupen 'schlüpften Sepp am 11. August 1762; sie verzehrten zunächst die leeren Eischalen, nahmen dann weiches Gras (Poa annua) als Nah- rung an, wuchsen sehr langsam und häuteten sich vor der Ueberwinterung zweimal. Hellin’s Raupen waren im März 6 mm, im April 12 mm lang und im Juni erwachsen (19 mm lang). Bei Sepp waren die beiden durchwinterten Raupen am 23. und 24. Juni erwachsen; sie verpuppten sich am 27. Juni bezw. 3. Juli und lieferten die Falter am 21. Juli (5) bezw. 28. Juli (©). Die Flugzeit währt von Ende Juli bis Ende August; der Beginn des Raupensta- diums ist also auf das letzte August-Drittel zu setzen.

Das große Apikalauge der Vorderilügel-Ober- seite (in Zelle 4 und 5) ist beim 5 und Q gewöhn- lich doppelt weiß gekernt (aus 2 Augen zusammen- gellossen), selten kommt es beim % blind vor (ab. caeca Tutt) ; zuweilen treten aber in den Zellen 2 und 3 der Vorderflügel noch kleine überschüssige schwarze Punkte oder Augen auf (ab. excessa Tutt). Die Hinterilügel-Oberseite trägt meistens nur 1 klei- nes Auge in Zelle 2, dem sich in den Zellen 3, 4 und 5 noch weitere 3 hinzugesellen können (ab. excessa Tutt); doch fehlen manchen Yo alle Augen auf den Hinterflügeln. Auch die Zahl und Anordnung der weißen Punkte der Hinterflügel-Unterseite, deren in der Regel 3 oder 4 vorhanden sind, schwankt zwischen 0 und 6. Wie bei £p. jurtina kommen auch bei Zifhonus albinistische (pathologische) Stücke vor, wo die rotgelbe Färbung der Oberseite gelblich- weiß (ab. subalbida Verity, Uebergangsform), bezw. ganz weiß (ab. albida Russell, extreme Form) er- scheint. Inwieweit das in der Berliner Entom. Zeitschr. XXXVI. 1891. p. 467 von Seebold unter dem Namen ab. mincki beschriebene Stück mit neapelgelbem Saumbande der Hinterflügel-Ober- seite hierher zu ziehen ist, kann ich augenblicklich wegen mir fehlender Original-Diagnose nicht ent- scheiden.

43. Coenonympha iphis Schiff. Von Beske allein vertreten. Die nächsten Flugorte sind Eutin (Peters), Niendorf an der Ostsee «(Semper, Laplace), Lübeck (Tessmann) und Lüneburg (Machleidt u. Steinvorth).:: Im: Gegensatz zu Ep. tithonus besitzt iphis in Deutschland eine tief eingebuchtete Nord- westgrenze, indem er, in der Osthälfte desselben allenthalben ziemlich häufig, im Nordwesten seltener wird und jenseit einer Linie von Eutin (einzeln) nach Lübeck. (nicht häufig), Lüneburg (selten), Helmstedt und:Wolfenbüttel (nicht gemein), Dessau (nicht selten), Halle (nicht häufig), Mühlhausen (ein- zeln), Hanau-(häufig), Frankfurt a. M. (häufig), Wiesbaden (nicht selten) und Aachen (nach Men- gelbier 2 Stunden südlich davon bei Einatten) nir- gends beobachtet ist. Der Falter fehlt in Holstein, Hannover, dem Harz, Westfalen, den Rheinlanden, Hessen und Waldeck.

I phis bewöhnt trockene, grasreiche Lichtungen, besonders der Tannenwälder, findet sich jedoch auch auf Wald- und trockenen Moorwiesen. Ihre Flug- zeit dauert von Mitte Juni (zuerst 50) bis Anfang August (verflogen). Das Ei und seine Ablage habe ich in der Illustr. Zeitschr. f. Entomologie V. Bd. 1900. p. 351 beschrieben. Von einer vollständigen Beschreibung der einzelnen Raupenstadien sind wir noch ziemlich weit entfernt; es sei mir daher ver-

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gönnt, das 1. Raupenstadium hier kurz zu skizzieren. Die am 21. Juli schlüpfenden Raupen waren von grünlichgelber Färbung, besaßen einen großen, gel- ben, grobkörnigen Kopf, eine breite braune Dorsale und jederseits eine schmale gleichgefärbte Subdor- sale und Stigmenlinie. Das letzte Segment endigte in 2 Spitzen. Der Rücken trug auf jedem Segment zwi- schen beiden Subdorsalen die 4 Trapezwarzen, jede mit einem feinen dunklen Haar besetzt; die Stigmen waren von den analog gebildeten Luftlochwarzen begleitet.

Die Variation erstreckt sich bei diesem Falter auf verschiedene Teile: 1. die ockerbraune Grund- farbe der Vorderflügel-Oberseite fällt bei manchen &C so dunkel aus, daß sie fast so bräunlichschwarz erscheint wie diejenige der Hinterflügel-Oberseite (subnigra). Die ockergelbe Grundfarbe der Vorder- tlügel-Oberseite ist bei einzelnen QQ so blaß (bleich ockergelb), daß sie die Färbung von Smerinthus guercus 5 erreicht (pallida),; die Hinterflügel-Ober- seite erscheint dann rauchgrau. 2. Die weiße Bin- denzeichnung der Hinterflügel-Unterseite, welche bei typischen Stücken aus 2 unregelmäßig gestalteten Flecken besteht, von denen der obere größer, der untere kleiner ist, verschwindet durch Verkleinerung der Flecken bei manchen (nicht bloß alpinen) Exemplaren fast ganz (der obere weiße Fleck ganz klein, der untere fehlt), oder bildet sich durch Ver- größerung der Flecken zu einem nahezu geschlosse- nen Bande aus. 3. Die in Zelle Ic bis 6 stehenden 6 Augen ändern beim 5 in der Größe sehr ab; sie können teilweise verschwinden (z. B. die in Zelle Ic und 5, oder die in Zelle 3, 4 und 5) und sich in seltenen Fällen bis auf das in Zelle 6 stehende re- duzieren (ab. carpathica Hormuzaki); vielfach fin- det nur eine Verkleinerung (zu Punkten) statt und hiermit Hand in Hand geht das Schwinden der Blei- linie und der rotgelben Linie vor dem Saume der Hin- terflügel-Unterseite (ab. anaxagoras Assmuss). 4. Die Augen der Hinterflügel-Unterseite schlagen beim © selten (höchstens das in Ic), beim © meist 2 bis 4 Stück in den Zellen lc bis 4 auf die Ober- seite durch.

(Fortsetzung tolgt.)

Die Zucht von Gallosamia promethea Dru. Von R. Zoguay, Selehow.

Im letzten Frühjahr erhielt ich mehrere Sen- dungen von nordamerikanischen Spinnerpuppen zum Verkaufe übersandt, darunter eine Anzahl C. promethea. Ein gutes Dutzend behielt ich für mich, um den sehr variierenden weiblichen Falter in meh- reren Exemplaren für meine Sammlung zu präpa- rieren. Am 17. Juli fand ich nachmittags ein Pär- chen in Copula. Das Weibchen legte annähernd 200 Eier. Als ich gegen Ende der Sommerferien nach den Eiern sah, fand ich einige geschlüpft. Da ich damals den prächtigen Voelschow noch nicht besaß, war ich in Verlegenheit, womit ich die Räup- chen füttern sollte. Pflaume, womit ich cecropia zog, wurde nicht angerührt, ebensowenig Linde, Kirsche, Walnuß und Salat. In meiner Not bat ich einen Gubener Freund um Rat. Postwendend kam die Nachricht, daß mit Salweide schöne Erfolge er- zielt worden seien. Zu meinem Glück hatte ich vor

"Jahren als Weide für meine Bienen einen solchen

Strauch angepflanzt. Auf diesen band ich die we-

nigen später geschlüpften Raupen und es ging. Die

Räupchen saßen anfangs in Gruppen auf der Unter-

seite der Blätter. Sie zeigten sich sehr träge, und (Fortsetzung in der Beilage).

1. Beilage

ZU

13

No. 2.

2. Jahrgang.

(Fortsetzung aus dem Hauptblatt)

die Kontrolle war deshalb sehr leicht. Nach der ersten Häutung (genaue Daten fehlen leider), waren sie schwarz und gelb geringelt. Auf den Ringeln standen kleine Warzen. Als ich nach einiger Zeit

wieder nach ihnen sah es war nicht gerade an- genehm, da die Weide dicht vor dem Bienenstande steht fand ich die Raupen in bläulich-weißem

Kleide. Die schwarzen, auf dem Rücken kräftig gel- ben Warzen hoben sich deutlich ab. Jetzt hatten sich die Raupen getrennt und saßen meist einzeln unter dem Blatte, das ihnen zur Nahrung diente. Als die Raupen etwa die Größe von erwachsenen S. pavonia-Raupen erreicht hatten, waren sie weiß- lich-grün. Die Warzen des 2. und 3. Ringes waren erößer als die andern und dunkelrot gefärbt. Auf dem 11. Ringe stand ein gelber Dornzapien. Dar- über war es Mitte September geworden. Ich band die Raupen, es waren noch 31 Stück, zu fünf in große "Beutel und trat dann die Ferien an, die ich nie in Selchow verbringe. Nach 14 Tagen fand ich die Raupen fast unverändert, nur recht vollsaftig. Ende Oktober untersuchte ich die Beutel wieder und sah zu meiner Freude, daß die Raupen sämtlich sich ein- gesponnen hatten. Die Weide hatte ihre übrigen Blätter fast alle verloren. Nur die Blätter mit den Gespinsten saßen noch an den Zweigen. Die Rau- pen hatten den Blattstiel an den Zweig angesponnen und den Blattrand nach der Mitte zusammengezogen, so daß das Gespinst den Eindruck eines welkenden Blattes machte, welches den Herbststürmen noch nicht zum Opfer gefallen war. Infolge der ein- tretenden Regenperiode schnitt ich die Zweige ab und verwahrte sie im frostsicheren Oberstübchen, wo sie dem Sommer entgegenschlummern sollen. Wer die Salweide zur Veriügung hat, sollte den Versuch machen, gleich mir die Räupchen auszu- binden. Der Erfolg wird nicht ausbleiben.

Einige Bemerkungen über die Insektenflügel. Von Otto Meißner. Potsdam. (Schluß.)

5. Aderung. Das Flügelgeäder spielt bekannt- lich in der Systematik der einzelnen Ordnungen eine sehr wichtige Rolle. Im allgemeinen entspringen aus der Flügelwurzel einige wenige stärkere Adern, die in der Längsrichtung des Flügels verlaufen, und dazwischen viele kleinere Queradern. So wird der Flügel in eine Anzahl von „Zellen‘‘ geteilt, die ihre besonderen Namen führen.

Die Hinterflüge! der Strepsipteren (auch Ple- copteren, Stylopiden, Fächer-, Dreh- oder Schrauben- flügler, bei Hymenopterenimagines schmarotzende Tiere) und Dermatopteren (Forficuliden, Ohrwür- mer) erscheinen fächerförmig geadert und werden auch wie ein Fächer zusammengelegt, bei den Dermatopteren müssen sie dann noch einmal gefaltet werden, um unter den sehr kleinen Deck- flügeln Platz zu finden, und zum Entfälten haben sie sogar ihre Zange .:am Hinterleibe nötig. Kein an- deres Insekt braucht zum Entfalten Semereelnudelnkein weitewes,, Orcan außer diesen selber. Die Ohrwürmer sind darin Spezialisten, obwohl sie sonst „rückständig“ sind, indem sie keine „vollkommene‘“ Verwandlung durchmachen.

6. Form und Größe der Flügel. Diese variieren bei den einzelnen Arten sehr stark, und dementsprechend ist auch das Flugvermögen sehr verschieden: Spinner und Schwärmer können, vor- nehmlich das männliche Geschlecht, stundenlang und kılometerweit fliegen, desgleichen Libellen und manche Heuschreckenarten, auch die Raupenfliegen haben einen schnellen und andauernden Flug. Die- ser rührt aber nicht allein von der Größe der Flügel her, sondern auch von der Muskelkraft, von der Gestalt und dem inneren Bau:des Körpers, zu- mal des Abdomens, und anderem.

Man kann sich die Frage vorlegen: Könnten die Flügel der Insekten nicht auch kleiner sein (bei gleicher Körpergröße)? An sich wäre das möglich. Nach Doflein kann ein Tagfalter wie Papilio u. a., deren Hinterflügel in lange „Schwänze‘“ auslaufen, auch noch recht gut fliegen, wenn diese Anhängsel durch den Biß eines Vogels verschwunden sind. Aber die Eleganz des Fluges ist doch vorbei, er wird unsicher, taumelnd, wie dies bei manchen Spannern u. a. Regel ist. Florfliegen (Chrysopa) können nach meinen Beobachtungen selbst mit Flügeln, die auf die Hälfte ihrer Länge gestutzt sind, noch rela- tiv gut fliegen. Dagegen wird bei den Fliegen (Musciden) das Flugvermögen schon sehr stark geschwächt, wenn ihre Flügel auch nur um !/, ver- kürzt werden.

7. Pigmentierung. Die Farben der Schmet- terlingsilügel und Käferdeckflügel, die unser Auge erfreuen, entstehen meist durch eingelagerte Pig- mente, seltener lediglich durch Schiller, der allerdings in vielen Fällen noch hinzukommt und die Farbenpracht wesentlich erhöht. Ueber die che- mische Konstitution dieser Pigmente ist man sich noch durchaus nicht im Klaren, manche betrachten sie als Harnsäurederivate. Auch über ihre entwick- lungsgeschichtliche Entstehung herrscht Dunkelheit. Man ist deshalb wohl kaum berechtigt, wie ge- legentlich geschieht, aus den „Augen‘‘ vieler Spin- ner und den fast pigmentlosen Flügeln der Sesien und anderer „Glasflügler‘“ den Schluß zu ziehen, daß eine allgemeine Tendenz zur Reduktion bezw. zum Verschwinden des Flügelpigments vorhanden sei, die sich auch bei den FHiymenopteren, Dipteren, Odonaten (Libellen) u. a. längst durchgesetzt habe. Es ist ja noch gar nicht erwiesen, ob die Vorfahren genannter Ordnungen jemals pigmentierte Flügel besessen haben!

8 Sekundäre Flügellosigkeit. Es wurde bereits erwähnt, daß manche Insekten das Flugvermögen, das ihre Voriahren besaßen, wieder eingebüßt haben, so de Laufkäfer (zum größe- ren Teile) unter den Coleopteren, auch Rüsselkäfer u. a. viele Gallwespen, zum Teil Formici- den (Ameisen), wenigstens in einem Geschlechte, von den Hymenopteren, viele Spinner- und Spanner weibchen von den Lepidopteren .. die ganz

kleine, den Dipteren nahestehende Ordnung der Siphonapteren (Puliciden, Suctiora, Flöhe); auch viele Dipteren, manche Heuschrecken

unter den Orthopteren; Bettwanze (Cimex lec- fularius L.) und Feuerwanze (Pyrrhocoris ap- terus L.) unter den Heteropteren, und noch andere.

Diese erworbene Flügellosigkeit ist am leichtesten jedenfalls, wie bereits oben angedeutet, mit Hülfe des Lamarckschen Prinzips von der Verkümme-

rung der Organe durch Nichtgebrauch zu erklären. Denn alle genannten Tiere sind entweder träge (Feuerwanzen, Spinnerweibchen) oder führen eine Lebensweise, bei der ihnen das Flugvermögen wenig nutzen könnte: was sollte eine Arbeitsameise z. B. mit Flügeln? Bezüglich der parasitisch leben- den Flöhe und Läuse ist es (nach Bachmetjew) nicht unmöglich, daß die Hautausdünstungen ihrer Wirte (Kohlensäure CO,, Schwefelwasserstoff H,S) durch eine Art Vergiftungswirkung das Flügel- wachstum verhindern. -

Bei den zahlreichen flügellosen Insekten, die auf stürmischen Ozeaninseln leben, ist endlich zwei- tellos die sog. „negative Auslese‘ der entscheidende Faktor gewesen, indem nur die schlechten Flieger oder überhaupt mit verkümmerten Flügeln ver- sehenen Tiere der Gefahr, vom Sturme erfaßt und ins Meer geweht zu werden, entgehen konnten. Es ist leicht verständlich, wenn es an gleichen Orten neben diesen flügellosen auch einige wenige Insekten mit sehr großen Flügeln gibt; denn ein

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kräitiger Flieger vermag sich auch wohl zu erhalten,

wenn er außerdem noch den Instinkt besitzt, bei

zu heitigen Winden sich am Boden zu verbergen. Potsdam, 1. Februar 1908.

Kleine Mitteilung. Ptilopkera piumigera. Herr Bayer in Rannersdorf teilt mit, daß er noch am 5. Dezember ein Q genannter Art im Freien gefunden hat.

Briefkasten.

Herrn H. in B.: Nach mir zugegangener Mit- teilung behalten die alten österreichischen Post- marken nur bis zum 1. Juni 1908 Gültigkeit. Alle Herren, welche solche in Zahlung erhielten, wollen hiervon Kenntnis nehmen, damit sie nicht unange- nehme Verluste erleiden. Man sollte überhaupt mit der Gewohnheit brechen, Postwertzeichen, Stempel- marken u. dergl. als Zahlungsmittel zu verwenden.

ID JEI-

Kaufe in Anzahl grosse Hirschkäfer-g'g,, am liebsten gespannt, auch einige 22, sowie Falter von atalanta, aglaja, rhamni gg, paphia usw. R.A. Polak, Amsterdam, Noordstr. 5.

Deil. livornica, Deil. nerii- Eier.

Im Laufe des Sommers und zur hier angegebenen Zeit habe ich oben ange- merkte, sicher befruchtete Eier als alleiniger Lieferant in sauberster Ver- packung abzugeben:

Im Mai-Juni Eier a Dtzd. frei 200 Pf.

Anfang Juli Eier von D. nerii, a Dtzd. frei 800 Pf.

Mitte August Eier von Sp. convolvuli, a Dtzd. frei 110 Pf.

Ende August, Anfang Sept. Eier von A. atropos, ä& Dtzd. frei 400 Pf.

Franz Rudolph Gravosa, Dalmatien.

WE” Anfang Mai gebe ich bekannt, was ich an Puppen und sonst noch ab- zugeben habe.

Ich erlaube mir noch mitzuteilen, dass ich nur das offeriere, was ich auch wirk- lich schaffen kann, 1907 war seit 18 Jahren ein Ausnahme-Jahr. 10). (0);

A. atropos, Sp. convolvuli,

von D. livornica,

Puppen, gesund, stark, nicht ange- trieben : euphorbiae Dtzd. 60, elpenor 80, ligustri 80, yavonia 70, selenaria 240 Pf.

Eier: versicolora Dtzd. 15 Pf.

Falter el.: cezeeigena J’ 70, ® 100, pyrina 20, janthina 15, ni 60, gutta 40, alehymista 50, fraxini 25, conversa 40, tilecta 50, selenaria 25, ambiguata g' 40, 2 50. Liste verlangen. , Alles auch im HENEEh gegen besseres Zuchtmatarial und "alter.

Hoff, Lehrer, Erfurt. BE Eier ME

von Sat. pavonia 15, Endr. versicolora 20, Anth. Pernyi 20 Pf. per Dizd., in Kürze lieferbar; nehmen auch Bestellungen auf per Mai lieferbare Eier von Agl. tau 15, und Raupen von Lim. populi p. Dtzd. 4,— Mk. entgegen. Karl Freyer, jun., Rumburg i. Böhm, Dee 500-500 Raupen von B. quercus gesucht vom Entomologischen Verein „Pacta“, Stettin. Angebote erbittet 4. Richter, Lehrer, Stettin, Löwestr. 7b.

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82, v striaatula Z2, Polye v. timur 92, -tamerlana g'Q, Hypor. laa g2, v. princeps d\, Thecl.

tengstr. v. tangutica g', Chrysoph. stand- fussi 9 Q, caspius SQ, Lyc. eurypilus Q\, sephyrus g'Q, christ. v. agnata g'®, aleedo 3 p, pheres 3, eum. v. privata 3, ie. v. icadius ZIP, erschofi IQ, phyllis 9Q, dam. v. schakuna JIQ, v. iphidamon g\2, gisela 12, pros. v. duplex 9’Q, ar. v. eyanecula g' 2, Pamph. argyrostigma 5‘, christophi Z, v. gem- matus d 2, Heop. antonia % Q, tessel-

lum, &, eribrellum 5%, alpina I, maculat. v. thibetanus g'. Smer. kinuderm. v. obsoleta 3, Deileph. euph. v. robertsii Q'2, Cer. petii g', Dicer.

przewalskii Q, Pyg. curt. v. canescens 5, Org. aurolimbata g', flavolimbata Z', Cif. confusa g‘, Das. nivalis JQ, Porth. kargalika 9%, Lym. aurora SQ, Act. artemis g', Sat. schenki g'Q, Acr. major 32, Leiom. symiroides 3‘, Agrot. de- iuneta SQ, squalida. senescens g'Q, vittata Sg‘. insignata JQ, v. paliescens J', emineus g' Q. trigoniea J’,degeneratag' Q, agalna 9, argillacea, exacta g'Q, cap- nistis S', deplanata g'Q, melancholica S2, lunata 2, erschofli gQ, juvenis I, elarivena SQ, stentzi ’Q, musivula g, juldussi 92, cand. y. rana .d\, nyetimera g', simil. v. ilavescens ZJ'Q umbrifera 9. pudica v. griseola d', sollers v. eandida g'Q, v. obumbrata S2, laeufiea 9, poecila 9, ala 2, junonia 92, alaina g', plumbea 4, heringi g', ignobilis Z', elara gIQ, vere-

eh No

ceunda g'Q, diplogramma g\, vallesiaca g'2, melanura g', v. raddei g’Q, multic. v. issykula g'Q, aequicuspis 2, sub- molesta g\, subeonspieua J' Q, hilaris JIY, intolerabilis g'Q,turbans 32, christophi SQ, vestilinea g'Q, bonza g\, scara- mangae g\, musculus g\, albifurca JQ, trifurca 92, Eicom. antiqua S'Q, Mam. impia g\, spalax dd, praeeipua g'Q, altaica IQ, amydra ZIQ, odiosa d\, armata g'Q, bryoptera g\, satanella JQ, ptochica g', marmorosa g\, mista Jg, cavernosa g'Q?, praedita SQ, furca SQ, bifida g'Q, furcula g'Q, Hader. khor- gossi 92, Tharg. fissilis 2, Man. xena g\2, Lup. inops g'Q, Pseudohad. sit gQ. coluter g'2, immunis SQ, pexa g'Q, schlumbergeri 2, minuta Hadena vicaria 2, deecipiens ', lama g'Q, Oncoen. strioligera IP, campicola g'Q, Blephor. paspa g\®, lama g', dianthoeeina g\, Phoeb. amoenus &\. turpis Q\, Ammagrot. suavis JS, Polia tennicornis Q'Q, chamaeleon JIQ, Dasyth. anartinus g'Q, Cteipel. sacelli SQ, Mis. cortex ZQ, Rhiga commoda 2, Argyr. suceinea g'Q, Tapin. mus- eulosa JQ, procera Z'Q, Leuc. imp. v. dungana d'Q, mesotrosta Z, opaca JQ, veluting Y Q, comma y. rhodocomma g., Monost. asiatica 5‘, Car. albina v. congesta 2, Netroc. quadrangula 5, Amphip. alpherakii 5‘, jankowskii Q, schrenckii, Raddea digna 5, Heraem. mandschurica & 2. Hipt bogdanovi G‘, Xanth. ledereri &, Lithoc. millieri v. centralasiae J9Q, Pu'ch catomelas 5%, Cuc. draeunculi G, v. amota g, cineracea ZQ, duplicata amoena g, spectabilis 2, magnifica JQ, splendida 92, Anart. mausi 5 2, Hyps. ingorum g', v. tamer- lana &, Ma. pieteti d', Cham. aretomys & 2, Isoclora maxima 'Q, viridis C, grumi g 2, Erythr. eudoxia %', suavis J, Arm. panaceorum 5‘, Leoc. albonitensy" 2, Thalp. gratiosa 5, Teles. yirgo 5%, Plus. hrrici 9, Palp. dentistrigata 2, henkei 7 Q, cestis ZQ, cestina Jg, freeta J'Q, fraetistrigata Y'Q, imitatrix 1%, simiola ZQ, christphiih 2, Leucan. rada 5. v. christophi 98, chinensis 9, cailino /', obscurata 92, eatocalis Y 2, scolopax 2. sinuosa 9, sequistria $Q, caucasica Z'Q, hyblae- oides Y'Q, tenera Z'Q. v. antiqua Z'Q, aberrans 52, Sypn. pieta 5, rectifasci- ata $, Pseud. amata 9, flavomaculata & 2, Lag. elegans 5, Ophid. tyrannus Jg‘, Catoc. remissa J'Q, timur ', Sif. bieti &, Cym. albicostata 5, Phragm. turensis &. Rhyp. leopardina g, Arct. inter- calaris 5, ersck. v. issyka ‘, glanh. v. manni X, Mon. flaveseens 5%, Cossus mongolieus 5, modestus 5. bohatschi $Q, Newelsk. albonubilis 5%, Heleoce. gloriosa &, nobilis sup. Z'Q, pulverulentus 5, consobrinus %, Hyp. turcomanica d, Dysp. lacertula Z2, Zeuz. nubila g, Hep. nebulosus. In prima frischen Exem- plaren mit 66°, %, Rab. p. e., Auswahl- sendungen bei Rücksendung und Kasse binnen S Tagen. Emil Funke, Dresden, Voglerstr. 35 1.

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Guben, den 18. April 1908.

ENro

Organ des Internationalen

QLOGISCHE > —/ ZEITSC

2. Jahrgang.

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Enlomologen- Bundes.

Herausgegeben unter Mitarbeit bedeutender Entomologen.

Die „Internationale Entomologische Zeitschrift“ erscheint jeden Sonnabend.

Abonnements nehmen alle Postanstalten und Buchhandlungen zum Preise von 1,50 M. vierteljährlich an, ebenso der Verlag in Guben bei direkter portofreier Kreuzband-Zusendung. Insertionspreis für die 3 gespaltene Petitzeile oder deren Raum 20 Pf. Abonnenten haben für ihre entomologischen Anzeigen vierteljährlich 25 Zeilen frei.

Schluss der Inseraten-Annahme jeden Mittwoch früh 7 Uhr.

Inhalt: Neue Parnassier aus der mnemosyne-Gruppe. Ein Beitrag zur Naturgeschichte von Selenephera lunigera Esp. sSelbstanfertigung von Zuchtbehältern. Das Summen der Dipteren. -

Neue Parnassier aus der mnemosyne-Gruppe. Von H. Fruhstorfer. P. mnemosyne dinianus nov. subspec.

(P. mnemosyne athene Stichel an versch. Orten partim;

Roger Verity, Rhop. Pal. t. 123 £. f. 4. ©. Digne, Basses Alpes.)

Mnemosyne aus der Umgebung von Digne, die ich neben 4 Yo, 3 QQ aus Griechenland in meiner Sammlung vereinigen konnte, differieren von mnemo- syne athene und mnemosyne nebrodensis Turati durch den schmäleren, kürzeren und weniger hyalinen Glassaum der Vorderflügel und den bei den. O9 größeren submarginalen weißlichen Schuppenfleck der Vorderflügel.

Der transcellulare, quadratische, kurze subapi- kale Glasfleck der Vorderflügel fehlt den meisten dinianus co vollständig und ist selbst bei meinen OO nur rudimentär oder wenig prägnant vorhanden.

Die Schwarzfleckung der Vorderflügel tritt stark zurück; ebenso fehlt bei einigen dinianus Zg die schwarze Makel am Zellapex der Hinterflügel völ- lig und ist selbst bei meinen dunkelsten yo und OQ weniger deutlich als bei den hellsten afhene SQ. Die Basalregion der Hinterflügel ist durchweg obsoleter schwarz; die bei afhene 5’ stets deutliche Subanalbinde fehlt meinen dinianus 5 gänzlich.

Benennung der distinkten neuen "Rasse nach Dinia, dem altrömischen Namen für das heutige falterberühmte Digne.

Als interessantes Faktum sei erwähnt, daß dinianus von nebrodensis Turati von Sizilien viel mehr differiert als nebrodensis von athene aus Griechenland.

Patria: Digne 14 Yo, 4 ©9, Coll. Fruhstorfer.

P. mnemosyne vernetanus nom. nov. für P. mnemos. pyrenaica Verity, Rhop. Pal. 1907, PAIEES23EE '5,5,0.

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Der Name pyrenaica recte pyrenaicus ist ein Homonym und bereits durch den 11 Jahre älteren apollo var. pyrenuica Harcourt praeoccupiert.

Patria: Pyrenees Orientales (Charles Oberthür leg.).

P. mnemosyne turatii nom. nov. für P. mnem. ab. pyrenaica Turati, Nat. Sicil. 1908 p. 16 t. If. 3,4 Sg $. 5, 0. 99.

Der Name muß aus genannten Gründen gleich- falls fallen.

Ich setze dafür mit besonderem Vergnügen Zuratii zu Ehren des Herrn Grafen E. Turati in Mai- land, als Ausdruck meiner Dankbarkeit für die De- dikation einer hochinteressanten Arbeit über süd- europäische Lepidopteren, die mit 6 wohlgelungenen photo-lithographischen Tafeln geschmückt ist.

Turatii ist namentlich im @ wesentlich reicher schwarz dekoriert als vernetanus.

Patria: Hautes Pyrenees, Umgebung von Gedre, von Lehrer Rondou entdeckt.

P. mnemosyne hartmanni forma umbratilis nova.

Nach Seitz sind hartmanni Stdiss. im allge- meinen weniger dunkel als melaina Honr. Nun liegen mir aber insbesondere aus Oberaudorf bei Kufstein und auch vom Königssee über 10 99 vor, die auf allen Flügeln völlig schwarz gefärbt sind (forma umbratilis). Daneben kommen dann überm Königssee auch Stücke vor mit gleichfalls schwarzen ‚Flügeln, bei denen jedoch die Median- region der Hinterflügel leichthin mit hellgrauen Schuppen bedeckt ist.

P. mnemosyne silesiacus nov. subspec.

2 5C, 2 99 aus Schlesien, die mir vorliegen, kommen im © der umbratilis nahe, ohne jedoch deren erschreckend dunkle Farbe anzunehmen, weil die Vorderflügel-Zelle und deren Umgebung immer noch einige weißlich gelbe Schuppenanhäufungen

aufweist. Die schwarzen Makeln aller Flügel neigen übrigens zum Verschwinden; die Hinterflügel weisen eine ungemein schwache basale Schwarzbesäumung auf und sind sonst von jedweder Schwarzbesäumung entblößt.

Der Glassaum der Vorderflügel verschwimmt namentlich unterseits mit der ’"Grundfärbung, und die Hinterflügel, selbst jene der 99, besitzen nur eine undeutliche gelbliche Beschuppung.

Der Gesamtcharakter von silesiacus ist demnach der einer Rasse mit äußerst diffuser verschwommener Zeichnung, so daß silesiacus eine Intermediatform darstellt zwischen den hellen mnemosyne der Ebene und den melanotischen bayerischen und österreichi- schen Gebirgsrassen.

"Patria: Schlesien, als Fundort wird das Walden- burger Gebirge angegeben, 2 59, Coll. Fruhst.

P. mnemosyne melaina subspec. nec. aberr.

Nach dem mir vorliegenden Material halte ich melaina Honr. für eine geographische Rasse, als welche sie auch Rebel bereits 1892 gelten ließ. Mir ist leider nicht bekannt, ob Honrath mit melaina etwa nur einen bestimmten weiblichen Körper, der vor ihm lag, oder die von Streckfuß am Pleckenpaß entdeckte carinthische sznemosyne-Rasse bezeichnen wollte und nur aus Vorsicht die Formel „aberratio‘“ vor melaina anwandte, ähnlich wie auch neuerdings Herr Graf Turati mit „aberratio‘ nebrodensis und „aberratio‘“ pyrenaica die äußerst distinkten geogra- phischen Rassen aus Sizilien und den Centralpyre- naeen umschrieben hat.

Unter melaina ließe sich allenfalls die Gesamt- heit jener alpinen mnremosyne zusammenfassen, wie sie mir aus der Tatra, Kärnten, der Umgebung von Wien, Niederösterreich (Lunz am See), Steiermark (St. Michael, Schoberstein, Reichenstein) in 66 SQ in meiner Sammlung vorliegen. Parvus Stichel aus Friesach könnte daneben als Subrasse existieren, vor- ausgesetzt, daß dieser Name nicht nur pygmaeenhafte Exemplare bezeichnet, wie sie mir auch vom Reichen- stein in Steiermark zugesandt wurden.

Etwa 36 YQ von Krain und Agram in meiner Sammlung entfernen sich bereits vom Gebirgstypus und lassen sich von solchen aus Südrußland kaum unterscheiden. Aber gesetzt den Fall, daß das Apel- lationsgericht für zoologische Paragraphenstreitig- keiten nicht zugibt, daß die Honrath’sche Be- nennung zu Recht besteht, muß für die austro-alpine mnemosyne-Gesamtheit ein Name eingeführt werden, als welchen ich

mnemosyne mesoleucus nova vorschlagen würde. Der Name ist nach einem uns unbekannten in der Mitte weißen Edelstein der Alten gebildet und soll hauptsächlich auf die Form der Tatra in Nordungarn basiert werden.

Die Subspecies mnemosyne nebrodensis Turati befindet sich jedoch in völliger Sicherheit, weil Graf Turati im Natur. Siciliano 1908 p. 15 ausdrücklich sagt: „e sembra sia la razza che rappresenti la specie in Sicilia,‘‘ so daß die Turati’sche Formel „ab. nova‘ eine rein individuelle und vorsichtige Auf- fassung wiedergibt, an deren Stelle die Staudinger- schen Zeitgenossen „var.‘‘ gesetzt hätten.

Ein Beitrag zur Naturgeschichte von Selenephera lunigera Esp. Von J. Srdinko, Prag-Smichow.

Als ich im Jahre 1900 in Kalk-Podol, einer im Nordwesten Böhmens gelegenen Sommerfrische weilte, fand ich im Walde eine auf der Erde krie- chende große Raupe. Auf den ersten Blick konnte

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man nach dem Habitus darauf schließen, daß es eine Spinnerraupe sei, und Hofmanns Raupenwerk ließ mich keinen Augenblick im Zweifel, daß ich die leb- haft und schön gefärbte Raupe von S$. /unigera ge- funden hatte, welche bei dem eben herrschenden Winde von einem Fichtenbaume herabgeschleudert worden war.

Dieser willkommene Fund einer mir bisher un- bekannten und dazu so seltenen Art spornte meinen entomologischen Eifer lebhaft an und weckte natür- licherweise auch die Begierde nach einem reichlichen Fange, den ich mit Hilfe des Klopfers zu erzielen hofite. Allein trotz anstrengenden und anhaltenden Abklopfens der jungen Fichten stellte sich der er- sehnte Erfolg nicht ein, was ich jedoch nur dem Umstande zuschrieb, daß die Bäumchen bereits zu stark waren und selbst ein heftiger Schlag mit dem 15/, kg schweren Klopfer nicht eine solche Erschüt- terung der elastischen, längeren Zweige herbeiführen konnte, um die daran sitzenden Raupen dadurch herabzuschleudern.

Trotz des Mißerfolges am ersten Tage versuchte ich mein Glück am nächsten Tage wieder und war nicht wenig überrascht, als ich eher einige aus- gewachsene S. /unigera-Raupen an den Stämmen sitzend vorfand, als eine mit dem Klopfer erbeutete. Im ersten Augenblicke dachte ich, daß die ruhig am Stamme sitzenden Raupen jene seien, die ich den Tag zuvor herabgeklopft und dann übersehen hatte und die inzwischen wieder auf die Bäume gekrochen waren; als ich aber gewahr wurde, daß ich mich an einer bisher nicht abgeklopiten Stelle des Waldes befand, schwand jeder Zweifel darüber, daß man er- wachsene S.<